摘要 | 第6-8页 |
abstract | 第8-9页 |
文献综述 | 第13-28页 |
第一章 小鼠大脑皮质发育 | 第13-24页 |
1.1 神经干细胞的增殖、分化 | 第13-16页 |
1.1.1 皮质发育过程中神经干细胞的特性及分类 | 第13-14页 |
1.1.2 神经干细胞增殖、分化的平衡 | 第14-15页 |
1.1.3 神经发生平衡的胞内调节信号 | 第15-16页 |
1.1.4 神经发生平衡的胞外调节信号 | 第16页 |
1.2 神经元的迁移 | 第16-20页 |
1.2.1 神经元的迁移模式 | 第17-19页 |
1.2.2 神经元迁移过程中的骨架可塑性 | 第19-20页 |
1.3 胚胎小鼠神经发生过程中的细胞周期调控 | 第20-24页 |
1.3.1 胚胎发育过程中细胞周期的长度 | 第21页 |
1.3.2 细胞周期调控影响神经元的命运决定 | 第21-22页 |
1.3.3 神经元的命运决定影响细胞周期 | 第22-24页 |
第二章 CTPs的研究概况 | 第24-28页 |
2.1 CTPs的结构与功能 | 第24-25页 |
2.2 CTPs的活性及其调节 | 第25页 |
2.3 CTPs单体聚合形成高级结构 | 第25-27页 |
2.4 CTPs与疾病 | 第27页 |
2.5 CTPs与神经系统发育 | 第27-28页 |
实验研究 | 第28-66页 |
第三章 过表达CTPs诱导“细胞蛇”结构的形成 | 第28-39页 |
3.1 材料方法 | 第28-34页 |
3.1.1 实验动物 | 第28-29页 |
3.1.2 试剂及材料 | 第29页 |
3.1.3 不同胚胎发育时期小鼠皮质总蛋白提取 | 第29-30页 |
3.1.4 WesternBlotting | 第30页 |
3.1.5 小鼠ctps-1基因全长片段的克隆 | 第30-31页 |
3.1.6 pCAG-CTPs-GFP真核表达载体的构建 | 第31-32页 |
3.1.7 子宫内电击转染 | 第32-33页 |
3.1.8 小鼠脑组织取材及切片制备 | 第33页 |
3.1.9 脑组织免疫荧光染色 | 第33页 |
3.1.10 统计学分析 | 第33-34页 |
3.2 结果 | 第34-36页 |
3.2.1 CTPs蛋白在胚胎小鼠大脑皮质发育过程中持续表达 | 第34页 |
3.2.2 成功构建pCAG-CTPs-GFP表达载体 | 第34-35页 |
3.2.3 过表达ctps诱导细胞内“细胞蛇”结构的形成 | 第35-36页 |
3.3 讨论 | 第36-38页 |
3.4 小结 | 第38-39页 |
第四章 过表达CTPs对小鼠大脑皮质发育过程中神经元迁移的影响 | 第39-49页 |
4.1 材料方法 | 第39-41页 |
4.1.1 实验动物 | 第39页 |
4.1.2 试剂及材料 | 第39-40页 |
4.1.3 子宫内电击转染 | 第40页 |
4.1.4 免疫荧光染色 | 第40页 |
4.1.5 统计学分析 | 第40-41页 |
4.2 结果 | 第41-45页 |
4.2.1 “细胞蛇”的形成抑制晚期出生神经元的迁移 | 第41页 |
4.2.2 “细胞蛇”结构的形成影响迁移神经元顶突起的长度 | 第41-43页 |
4.2.3 “细胞蛇”结构的形成延缓了神经元的迁移进程 | 第43-44页 |
4.2.4 “细胞蛇”结构的形成不改变神经元的命运 | 第44-45页 |
4.3 讨论 | 第45-48页 |
4.4 小结 | 第48-49页 |
第五章 过表达CTPs对神经干细胞增殖和分化的影响 | 第49-58页 |
5.1 材料方法 | 第49-51页 |
5.1.1 实验动物 | 第49页 |
5.1.2 试剂及材料 | 第49-50页 |
5.1.3 子宫内电击转染 | 第50页 |
5.1.4 BrdU活体注射 | 第50页 |
5.1.5 免疫荧光染色 | 第50页 |
5.1.6 统计学分析 | 第50-51页 |
5.2 结果 | 第51-56页 |
5.2.1 “细胞蛇”结构的形成破坏了神经干细胞增殖-分化的平衡 | 第51页 |
5.2.2 “细胞蛇”结构的形成抑制神经祖细胞的增殖 | 第51-54页 |
5.2.3 “细胞蛇”结构的形成抑制神经干细胞的分裂活性 | 第54-56页 |
5.2.4 “细胞蛇”结构的形成促进神经祖细胞分化为神经元 | 第56页 |
5.3 讨论 | 第56-57页 |
5.4 小结 | 第57-58页 |
第六章 过表达CTPs对神经祖细胞增殖的抑制作用具有细胞周期依赖的特性 | 第58-66页 |
6.1 材料方法 | 第58-59页 |
6.1.1 实验动物 | 第58-59页 |
6.1.2 试剂及材料 | 第59页 |
6.1.3 子宫内电击转染及BrdU活体注射 | 第59页 |
6.1.4 免疫荧光染色 | 第59页 |
6.1.5 统计学分析 | 第59页 |
6.2 结果 | 第59-64页 |
6.2.1 在S期“细胞蛇”结构的形成抑制神经祖细胞的增殖 | 第59-61页 |
6.2.2 G2/M期“细胞蛇”结构的形成抑制神经祖细胞的增殖 | 第61-62页 |
6.2.3 G1早期“细胞蛇”结构解聚,对神经祖细胞增殖的抑制作用解除 | 第62-63页 |
6.2.4 G1晚期过表达CTPs抑制亚室带神经祖细胞的增殖 | 第63-64页 |
6.3 讨论 | 第64-65页 |
6.4 小结 | 第65-66页 |
结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-78页 |
致谢 | 第78-80页 |
作者简介 | 第80-81页 |