| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 引言 | 第12-17页 |
| 肥大细胞脱颗粒肽诱导肥大细胞脱颗粒的机制研究 | 第17-32页 |
| 1 材料 | 第17-18页 |
| 1.1 细胞株 | 第17页 |
| 1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 1.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.4 主要试剂溶液的配制 | 第18页 |
| 2 方法 | 第18-23页 |
| 2.1 P815细胞的培养 | 第18-19页 |
| 2.2 检测MCDP对细胞的毒性作用 | 第19页 |
| 2.3 P815细胞组胺释放量及释放率测定 | 第19页 |
| 2.4 RT-qPCR检测Pik3r3、Akt2、Gsk-3 β相关基因mRNA表达量 | 第19-22页 |
| 2.5 流式细胞术检测Pi3k、Akt、Gsk-3 β蛋白的表达量 | 第22-23页 |
| 2.6 统计方法 | 第23页 |
| 3 结果 | 第23-28页 |
| 3.1 MCDP对细胞的毒性作用 | 第23-24页 |
| 3.2 MCDP对细胞释放组胺的影响 | 第24-25页 |
| 3.3 RT-qPCR 检测 MCDP 对 PI3K/Akt 通路上Pik3r3、Akt2、Gsk-3PmRNA 的影响 | 第25-27页 |
| 3.4 流式细胞术检测MCDP对PI3K/Akt通路上Pi3k、Akt、Gsk-3β蛋白的影响 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-32页 |
| 基于PI3K/Akt信号通路探讨地肤子皂苷对MCDP诱导肥大细胞活化脱颗粒的影响 | 第32-46页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| 1.1 细胞株 | 第32页 |
| 1.2 主要试剂 | 第32页 |
| 1.3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 1.4 主要试剂溶液的配制 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-37页 |
| 2.1 P815细胞的培养 | 第33-34页 |
| 2.2 检测LY294002、地肤子皂苷对细胞的毒性作用 | 第34页 |
| 2.3 RT-qPCR检测Pik3r3、Akt2、Gsk-3β相关基因mRNA表达量 | 第34-36页 |
| 2.4 流式细胞术检测Pi3k、Akt、Gsk-3 β蛋白的表达量 | 第36-37页 |
| 2.5 统计学方法 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-40页 |
| 3.1 RT-qPCR 检测不同组别的 Pik3r3、Akt2、Gsk-3β mRNA 的变化 | 第37-38页 |
| 3.2 流式细胞术检测不同组别Pi3k、Akt、Gsk-3β蛋白的影响 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-46页 |
| 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 文献综述 | 第51-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简历 | 第60页 |
