| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 中英文缩写词表(Abbreviations) | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 植物激素脱落酸（ABA）的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.1.1 脱落酸的合成 | 第16页 |
| 1.1.2 脱落酸的信号转导途径 | 第16-17页 |
| 1.1.3 脱落酸(ABA)受体的研究进展 | 第17页 |
| 1.1.4 植物激素脱落酸在逆境胁迫下的响应 | 第17-18页 |
| 1.2 转录因子 | 第18-21页 |
| 1.2.1 转录因子的结构与功能 | 第18-19页 |
| 1.2.2 bZIP家族转录因子 | 第19-20页 |
| 1.2.3 拟南芥转录因子激活活性分析 | 第20-21页 |
| 1.3 本文研究内容及意义 | 第21-23页 |
| 1.3.1 研究目的及意义 | 第21页 |
| 1.3.2 本文的主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 转基因拟南芥的分子鉴定 | 第23-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 植物材料及培养 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株及载体质粒 | 第23-24页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第24页 |
| 2.1.4 试剂及耗材 | 第24页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第24-26页 |
| 2.2.1 培养基的配制 | 第24-25页 |
| 2.2.2 实验试剂的配制 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.3.1 重组质粒鉴定 | 第26-27页 |
| 2.3.2 农杆菌GV3101感受态细胞制备 | 第27页 |
| 2.3.3 重组质粒转化农杆菌GV3101及鉴定 | 第27-28页 |
| 2.3.4 农杆菌花絮浸染法转化拟南芥 | 第28页 |
| 2.3.5 转化拟南芥植株的筛选 | 第28-29页 |
| 2.3.6 拟南芥叶片核DNA粗提取 | 第29页 |
| 2.3.7 转基因拟南芥的鉴定 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与分析 | 第30-32页 |
| 2.4.1 重组质粒的鉴定 | 第30页 |
| 2.4.2 菌落 PCR 鉴定 | 第30-31页 |
| 2.4.3 转基因拟南芥的基因组鉴定 | 第31-32页 |
| 第三章 转基因拟南芥植株的转录表达分析 | 第32-39页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.1 植物材料及培养 | 第32页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第32页 |
| 3.1.3 实验试剂及耗材 | 第32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.2.1 cDNA的提取 | 第32-34页 |
| 3.2.2 RT-PCR | 第34-36页 |
| 3.3 实验结果 | 第36-39页 |
| 3.3.1 重组基因在转基因拟南芥中转录水平的表达 | 第36-39页 |
| 第四章 转基因拟南芥与野生型拟南芥表型差异分析 | 第39-44页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第39页 |
| 4.2 实验方法 | 第39页 |
| 4.2.1 萌发率的差异（无菌操作） | 第39页 |
| 4.2.2 转基因拟南芥与野生型拟南芥其它表型差异 | 第39页 |
| 4.3 实验结果 | 第39-44页 |
| 4.3.1 ABI5调节种子的萌发和幼苗的生长 | 第39-40页 |
| 4.3.2 其它表型分析 | 第40-44页 |
| 第五章 转基因拟南芥受到胁迫及激素处理的响应 | 第44-56页 |
| 5.1 实验材料与试剂 | 第44页 |
| 5.1.1 植物材料培养 | 第44页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第44页 |
| 5.2 实验方法 | 第44-45页 |
| 5.2.1 赤霉素(GA)、脱落酸及不同胁迫对拟南芥种子萌发的影响 | 第44页 |
| 5.2.2 不同胁迫处理对拟南芥幼苗生长的影响 | 第44-45页 |
| 5.3 实验结果 | 第45-56页 |
| 5.3.1 ABA抑制种子萌发 | 第45-47页 |
| 5.3.2 GA对种子萌发的影响 | 第47-48页 |
| 5.3.3 过表达株系对不同胁迫的响应 | 第48-56页 |
| 第六章 ABF1启动子驱动的GUS基因表达模式分析 | 第56-59页 |
| 6.1 材料 | 第56页 |
| 6.1.1 载体质粒及植物材料 | 第56页 |
| 6.1.2 主要试剂和仪器 | 第56页 |
| 6.1.3 实验试剂的配制 | 第56页 |
| 6.2 实验方法 | 第56-57页 |
| 6.2.1 GUS 染色 | 第56-57页 |
| 6.3 实验结果 | 第57-59页 |
| 第七章 pHQ系列瞬间表达系统之内标载体的构建 | 第59-68页 |
| 7.1 实验材料 | 第59-60页 |
| 7.1.1 菌株及载体质粒 | 第59页 |
| 7.1.2 主要试剂 | 第59页 |
| 7.1.3 主要仪器 | 第59页 |
| 7.1.4 试剂的配制 | 第59-60页 |
| 7.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 7.2.1 荧光素酶基因(Luciferase)的克隆 | 第60-62页 |
| 7.2.2 酚氯仿抽提纯化 | 第62页 |
| 7.2.3 大肠杆菌DH5α感受态制备 | 第62页 |
| 7.2.4 重组质粒转化大肠杆菌DH5α | 第62-63页 |
| 7.2.5 质粒的大量提取 | 第63页 |
| 7.2.6 拟南芥原生质体的分离 | 第63页 |
| 7.3 实验结果 | 第63-68页 |
| 7.3.1 荧光素酶基因(Luciferase)的克隆 | 第63-66页 |
| 7.3.2 拟南芥原生质体的分离 | 第66-68页 |
| 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
