| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 研究现状、成果 | 第14-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 一、PTEN敲除小鼠前列腺癌模型的蛋白组学分析 | 第19-25页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-23页 |
| 1.1.1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 1.1.3 数据分析结果 | 第23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 二、沉默或抑制PTEN基因对前列腺癌细胞生长和凋亡的影响 | 第25-41页 |
| 2.1 对象和方法 | 第25-34页 |
| 2.1.1 材料 | 第25-27页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第27-34页 |
| 2.1.3 统计学分析 | 第34页 |
| 2.2 结果 | 第34-38页 |
| 2.2.1 MTT 结果 | 第34-35页 |
| 2.2.2 流式细胞仪检测22Rv1转染siRNA PTEN后细胞凋亡 | 第35页 |
| 2.2.3 PTEN及Chop的mRNA表达水平 | 第35页 |
| 2.2.4 PTEN及Chop的蛋白表达水平 | 第35-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 三、Chop基因对前列腺癌细胞生长和凋亡的影响 | 第41-56页 |
| 3.1 对象和方法 | 第41-51页 |
| 3.1.1 材料 | 第41-42页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第42-51页 |
| 3.2 结果 | 第51-53页 |
| 3.2.1 22Rvl细胞Chop基因抑制、Chop基因过表达时MTT检测结果 | 第51页 |
| 3.2.2 流式细胞仪检测22Rvl抑制、过表达Chop基因后细胞调亡率变化 | 第51-52页 |
| 3.2.3 检测抑制Chop基因抑制及过表达时下游基因的蛋白表达水平变化情况. | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 四、构建出可诱导表达c-myc基因的22Rv1细胞系 | 第56-65页 |
| 4.1 对象和方法 | 第56-61页 |
| 4.1.1 材料 | 第56-57页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第57-61页 |
| 4.1.3 统计学分析 | 第61页 |
| 4.2 结果 | 第61-63页 |
| 4.2.1 基因测序结果 | 第61-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-64页 |
| 4.4 小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 论文创新点 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第74-75页 |
| 综述 | 第75-96页 |
| PTEN与UPR在前列腺癌中表达相关性及意义 | 第75-82页 |
| c-myc基因在前列腺癌中的意义与四环素诱导表达系统 | 第82-86页 |
| 综述参考文献 | 第86-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
