首页--医药、卫生论文--中国医学论文--中药学论文--中药化学论文--有效成分的分离与提取论文

一株海洋细菌Renibacterium sp.QD1中的壳聚糖酶及其产酶条件研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
前言第14-22页
    1. 几丁质、壳聚糖和壳寡糖第14-16页
        1.1 几丁质第14页
        1.2 壳聚糖第14-15页
        1.3 壳寡糖第15-16页
            1.3.1 壳寡糖的应用第15页
            1.3.2 壳寡糖的制备第15-16页
    2. 壳聚糖酶(chitosanase)第16-22页
        2.1 壳聚糖酶的来源第17页
        2.2 壳聚糖酶的分类与结构特点第17-19页
        2.3 壳聚糖酶的性质特点第19-20页
            2.3.1 分子质量第19页
            2.3.2 最适反应温度与热稳定性第19页
            2.3.3 最适 pH 值与 pH 值稳定性第19页
            2.3.4 金属离子的影响第19-20页
            2.3.5 底物特异性第20页
        2.4 壳聚糖酶的研究进展第20-21页
        2.5 研究目的和意义第21-22页
第一章 产壳聚糖酶菌株 Renibacterium sp. QD1 的筛选及鉴定第22-34页
    1. 实验材料第22-23页
        1.1 试剂第22页
        1.2 仪器第22-23页
        1.3 菌种、质粒第23页
        1.4 培养基第23页
    2. 实验方法与步骤第23-26页
        2.1 胶体壳聚糖配制方法第23-24页
        2.2 菌种的初筛第24页
        2.3 菌种的复筛第24页
        2.4 降解产物分析第24页
        2.5 菌种鉴定第24-26页
            2.5.1 菌的形态观察第24页
            2.5.2 提取细菌基因组 DNA第24页
            2.5.3 制备感受态细胞 E.coli DH5α第24页
            2.5.4 细菌 16S rDNA 序列的克隆与测定第24-25页
            2.5.5 序列分析第25-26页
    3. 结果与分析第26-33页
        3.1 菌株筛选结果第26页
        3.2 降解产物分析第26-29页
        3.3 QD1 形态观察第29页
        3.4 QD116SrDNA 基因的克隆与序列分析第29-31页
        3.5 16SrDNA 基因序列测序结果第31-32页
        3.6 16SrDNA 基因序列分析和系统发育树的构建第32-33页
    4. 小结与讨论第33-34页
第二章 Renibacterium sp. QD1 所产壳聚糖酶的分离纯化及鉴定第34-43页
    1 实验材料第34-35页
        1.1 试剂材料第34页
        1.2 实验仪器第34页
        1.3 缓冲液第34-35页
        1.4 培养基第35页
        1.5 菌株第35页
    2 实验方法第35-38页
        2.1 酶活力测定方法-DNS 法第35页
        2.2 酶蛋白浓度测定的方法第35-36页
        2.3 粗酶液的制备第36页
        2.4 SDS-PAGE 后蛋白质复性第36页
        2.5 硫酸铵盐析第36-37页
        2.6 疏水层析(HIC)第37页
        2.7 SDS-PAGE 蛋白电泳第37页
        2.8 酶活测定标准曲线制作方法第37-38页
    3 实验结果第38-42页
        3.1 DNS 法测定氨基葡萄糖盐酸盐标准曲线第38-39页
        3.2 BCA 法测定蛋白含量第39-40页
        3.3 SDS-PAGE 凝胶原位复性第40页
        3.4 硫酸铵沉淀第40页
        3.5 疏水层析第40-41页
        3.6 SDS-PAGE 电泳第41页
        3.7 分离纯化结果第41-42页
    4 小结与讨论第42-43页
第三章 壳聚糖酶 Csn-A 的酶学性质研究第43-52页
    1 材料与方法第43-45页
        1.1 实验材料第43页
            1.1.1 仪器第43页
            1.1.2 试剂第43页
            1.1.3 材料第43页
        1.2 实验方法第43-45页
            1.2.1 底物特异性实验第43页
            1.2.2 酶的最适温度第43-44页
            1.2.3 酶的热稳定性研究第44页
            1.2.4 酶的最适反应 pH第44页
            1.2.5 酶的 pH 稳定性第44页
            1.2.6 EDTA、SDS 以及金属离子对酶活性的影响第44-45页
            1.2.7 酶降解产物分析与降解方式研究第45页
    2 实验结果第45-50页
        2.1 酶的底物特异性第45-46页
        2.2 酶的最适反应温度第46页
        2.3 酶的温度稳定性第46-47页
        2.4 酶的最适反应 pH第47页
        2.5 酶的 pH 稳定性第47-48页
        2.6 EDTA、SDS 以及金属离子对酶活性的影响第48-49页
        2.7 不同浓度 Mn~(2+)对酶活性的影响第49页
        2.8 酶降解产物分析与降解方式第49-50页
    3 小结与讨论第50-52页
第四章 Renibacterium sp. QD1 产壳聚糖酶菌株发酵条件的优化第52-63页
    1. 材料与方法第52-55页
        1.1 材料与仪器第52-53页
            1.1.1 试剂与原料第52页
            1.1.2 主要仪器第52页
            1.1.3 菌株第52页
            1.1.4 缓冲液第52-53页
        1.2 实验方法第53-55页
            1.2.1 酶活的测定方法第53页
            1.2.2 菌株最适培养温度研究第53页
            1.2.3 QD1 菌株生长曲线测定第53页
            1.2.4 QD1 菌株产酶曲线的测定第53页
            1.2.5 培养基中壳聚糖成分的研究第53-54页
            1.2.6 发酵碳源优化第54页
            1.2.7 发酵氮源优化第54页
            1.2.8 液体培养基中缓冲体系(K_2HPO_4-KH_2PO_4)对产酶的影响第54页
            1.2.9 Mn~(2+)对菌株产酶的影响第54-55页
    2. 结果与分析第55-61页
        2.1 菌株最适产酶培养温度研究第55页
        2.2 QD1 菌株生长曲线测定第55-56页
        2.3 QD1 菌株产酶曲线的测定时间第56-57页
        2.4 培养基中壳聚糖成分的研究第57-58页
        2.5 发酵碳源优化第58页
        2.6 发酵氮源优化第58-59页
        2.7 液体培养基中缓冲体系(K_2HPO_4-KH_2PO_4)对产酶的影响第59-60页
        2.8 Mn~(2+)对菌株产酶的影响第60-61页
    3. 小结与讨论第61-63页
第五章 Renibacterium sp. QD1 壳聚糖酶基因 csn-A 的克隆与序列分析第63-80页
    1 材料与方法第63-69页
        1.1 材料与仪器第63-64页
            1.1.1 试剂第63页
            1.1.2 菌种、质粒和培养基第63页
            1.1.3 仪器第63-64页
        1.2 实验方法与步骤第64-69页
            1.2.1 构建基因文库的方法(鸟枪法)原理第64-65页
            1.2.2 基因组的提取第65页
            1.2.3 DNA 的片段化第65-66页
            1.2.4 酶切片段的回收纯化第66页
            1.2.5 载体的选择与制备第66-67页
            1.2.6 DNA 片段与载体的连接第67页
            1.2.7 Escherichia coli DH5α感受态细胞的制备第67页
            1.2.8 重组载体的转化第67-68页
            1.2.9 阳性克隆的功能筛选第68页
            1.2.10 不同浓度壳聚糖对 DH5α的生长抑制第68页
            1.2.11 引物合成与 DNA 测序第68页
            1.2.12 蛋白质测序第68-69页
    2 实验结果与讨论第69-78页
        2.1 基因文库的构建第69-72页
            2.1.1 基因组的提取第69页
            2.1.2 DNA 的片段化第69-71页
            2.1.3 质粒提取第71页
            2.1.4 质粒的酶切和回收纯化第71-72页
            2.1.5 转化细胞的筛选第72页
        2.2 蛋白质 N 端测序第72-77页
            2.2.1 壳聚糖纯酶 Csn-A 的纯度检测第72-74页
            2.2.2 蛋白质 N 端测序结果第74-77页
        2.3 PCR 结果与测序第77-78页
            2.3.1 PCR 电泳结果第77-78页
            2.3.2 测序结果与分析第78页
        2.4 由核苷酸翻译成氨基酸及信号肽的预测第78页
    3 小结与讨论第78-80页
总结与展望第80-81页
参考文献第81-84页
附录第84-96页
    附录 1 常用培养基的配制方法第84-86页
    附录 2 常用试剂、溶液的配制方法第86-91页
    附录 3 常用分子生物学实验方法第91-95页
    附录 4 缩略词汇总第95-96页
致谢第96-97页
个人简历第97页
发表的学术论文第97页
申请专利第97-98页

论文共98页,点击 下载论文
上一篇:JAK2/STAT3信号转导通路在门静脉高压大鼠模型脾脏纤维化过程中的作用
下一篇:鲫鱼血清中可溶性瘦素受体的检测