| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-13页 |
| 第二章 材料与方法 | 第13-27页 |
| 2.1 研究资料与仪器设备 | 第13-16页 |
| 2.1.1 实验用动物 | 第13页 |
| 2.1.2 试剂 | 第13-15页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第15-16页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-27页 |
| 2.2.1 出生后1天SD大鼠脊髓星形胶质细胞原代培养 | 第16-17页 |
| 2.2.2 过表达质粒的构建 | 第17-20页 |
| 2.2.3 细胞的转染 | 第20-22页 |
| 2.2.4 荧光定量PCR | 第22-24页 |
| 2.2.5 western blot | 第24-25页 |
| 2.2.6 免疫细胞荧光 | 第25页 |
| 2.2.7 星形胶质细胞增殖能力检测 | 第25-26页 |
| 2.2.8 星形胶质细胞的迁移能力检测 | 第26页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第26-27页 |
| 第三章 实验结果 | 第27-50页 |
| 3.1 Fign在大鼠脊髓组织生后发育过程中的表达 | 第27-28页 |
| 3.2 干扰Fign对体外培养星形胶质细胞迁移的影响 | 第28-34页 |
| 3.2.1 大鼠脊髓星形胶质细胞体外培养和纯度鉴定 | 第29-30页 |
| 3.2.2 Fign siRNA干扰效率的确定 | 第30页 |
| 3.2.3 干扰Fign表达对星形胶质细胞迁移和增殖的影响 | 第30-32页 |
| 3.2.4 干扰Fign表达抑制星形胶质细胞的损伤迁移和定向迁移 | 第32-34页 |
| 3.3 干扰Fign表达对星形胶质细胞骨架的影响 | 第34-38页 |
| 3.3.1 Fign蛋白在星形胶质细胞中的定位 | 第34-35页 |
| 3.3.2 敲降Fign表达对星形胶质细胞微管骨架结构的影响 | 第35-38页 |
| 3.4 Fign功能与微管的相互关系 | 第38-44页 |
| 3.4.1 siRNA/IF实验证明Fign主要作用于酪氨酸化的微管 | 第38-42页 |
| 3.4.2 Fign的微管切割作用 | 第42-43页 |
| 3.4.3 过表达Fign可切割酪氨酸化tubulin | 第43-44页 |
| 3.5 马达蛋白kinesin-12 对微管骨架和细胞迁移的影响 | 第44-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-55页 |
| 第五章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 英文缩写词表 | 第59-61页 |
| 综述 | 第61-83页 |
| 综述参考文献 | 第74-83页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文、参与的项目和获得的荣誉 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
