中文摘要 | 第11-13页 |
英文摘要 | 第13-15页 |
前言 | 第16-18页 |
参考文献 | 第17-18页 |
第一章 体内获得性耐药进程中白念珠菌表型变化的研究 | 第18-28页 |
1. 实验材料 | 第18-20页 |
1.1. 实验菌株 | 第18页 |
1.2. 主要试剂及培养基配方 | 第18-20页 |
1.3. 主要仪器 | 第20页 |
2. 实验方法 | 第20-22页 |
2.1. 菌落形态以及光学显微镜镜下结构 | 第20-21页 |
2.2. 透射电镜观察菌株超微结构 | 第21页 |
2.3. 观察实验菌株的菌丝形成能力 | 第21页 |
2.4. 表面疏水性(CSH)实验 | 第21-22页 |
2.5. 絮凝实验 | 第22页 |
3. 实验结果 | 第22-25页 |
3.1. 观察菌落形态以及光学显微镜镜下结构 | 第22-23页 |
3.2. 透射电镜观察菌株超微结构 | 第23页 |
3.3. 比较实验菌株间的菌丝形成能力的差异 | 第23-24页 |
3.4. 表面疏水性(CSH)实验 | 第24-25页 |
3.5. 絮凝实验 | 第25页 |
4. 讨论 | 第25-27页 |
参考文献 | 第27-28页 |
第二章 体内获得性耐药进程中白念珠菌生物膜形成能力及其药物敏感性变化的研究 | 第28-43页 |
第一节 体内获得性耐药进程中白念珠菌生物膜形成能力的研究 | 第28-36页 |
1. 实验材料与仪器设备 | 第28-29页 |
1.1. 实验菌株 | 第28页 |
1.2. 主要试剂及培养基配方 | 第28-29页 |
1.3. 主要仪器 | 第29页 |
2. 实验方法 | 第29-30页 |
2.1. 白念珠菌生物膜制备 | 第29页 |
2.2. 倒置显微镜观察比较各菌株生物膜生长情况 | 第29-30页 |
2.3. 共聚焦激光扫描显微镜下生物膜结构观察 | 第30页 |
2.4. 白念珠菌生物膜活力测定 | 第30页 |
3. 实验结果 | 第30-34页 |
3.1. 成熟白念珠菌生物膜外观形态 | 第30页 |
3.2. 倒置显微镜生物膜结构观察 | 第30-32页 |
3.3. 共聚焦激光扫描显微镜生物膜结构观察 | 第32-33页 |
3.4. 白念珠菌生物膜活力测定 | 第33-34页 |
4. 讨论 | 第34-35页 |
参考文献 | 第35-36页 |
第二节 体内获得性耐药进程中白念珠菌药物敏感性变化的研究 | 第36-43页 |
1. 实验材料 | 第36页 |
1.1. 实验菌株 | 第36页 |
1.2. 主要试剂及培养基配方 | 第36页 |
1.3. 主要仪器 | 第36页 |
2. 实验方法 | 第36-39页 |
2.1. 生物膜形成用菌悬液制备 | 第37页 |
2.2. 96孔组织培养板生物膜制备 | 第37页 |
2.3. 白念珠菌药物敏感性测定 | 第37-39页 |
3. 实验结果 | 第39-40页 |
3.1. 悬浮状态白念珠菌药物敏感性测定结果 | 第39页 |
3.2. 生物膜状态白念珠菌药物敏感性测定结果 | 第39-40页 |
3.3. 实验菌株对受试药物敏感性判读 | 第40页 |
4. 讨论 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-43页 |
第三章 实验菌株转录组测序和分析 | 第43-56页 |
1. 实验材料 | 第43-44页 |
1.1. 实验菌株 | 第43页 |
1.2. 试剂与仪器 | 第43-44页 |
2. 实验方法 | 第44-45页 |
2.1. RNA提取 | 第44页 |
2.2. 文库构建 | 第44页 |
2.3. 簇生成(TruSeq PE Cluster Kit v3-cBot-HS) | 第44页 |
2.4. 上机测序(TruSeq SBS Kit v3-HS) | 第44页 |
2.5. 数据分析 | 第44-45页 |
3. 实验结果 | 第45-50页 |
3.1. 过滤后的数据量 | 第45-46页 |
3.2. 测序数据与参照基因组比对 | 第46页 |
3.3. 用药前敏感株和用药后高度耐药株基因表达的差异 | 第46-47页 |
3.4. 相关性分析 | 第47-49页 |
3.5. 差异基因的GO功能富集分析 | 第49页 |
3.6. 差异基因的生物学通路分析 | 第49-50页 |
4. 讨论 | 第50-54页 |
参考文献 | 第54-56页 |
全文小结 | 第56-58页 |
综述 | 第58-64页 |
参考文献 | 第62-64页 |
在读期间发表文章 | 第64-65页 |
在读期间参与会议 | 第65页 |
在读期间参加培训 | 第65-66页 |
致谢 | 第66-68页 |