摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
缩略词 | 第14-15页 |
引言 | 第15-18页 |
第一部分 氯化锂对脐带间充质干细胞增殖、分化的影响及机制研究 | 第18-35页 |
前言 | 第18页 |
1.1 材料与方法 | 第18-27页 |
1.1.1 主要试剂 | 第18-20页 |
1.1.2 hUC-MSCs的分离、培养、传代及冻存 | 第20页 |
1.1.3 hUC-MSCs表型鉴定 | 第20-21页 |
1.1.4 CCK-8 实验 | 第21页 |
1.1.5 Ed U染色 | 第21-22页 |
1.1.6 PI染色 | 第22页 |
1.1.7 FITC Annexin V染色 | 第22页 |
1.1.8 β-半乳糖苷酶染色 | 第22页 |
1.1.9 qRT-PCR | 第22-25页 |
1.1.10 Western Blot | 第25-26页 |
1.1.11 hUC-MSCs的神经诱导分化 | 第26页 |
1.1.12免疫荧光 | 第26-27页 |
1.1.13统计学分析 | 第27页 |
1.2 结果 | 第27-32页 |
1.2.1 hUC-MSCs表面标记物的鉴定 | 第27页 |
1.2.2 LiCl对hUC-MSCs增殖的影响 | 第27-28页 |
1.2.3 LiCl对hUC-MSCs周期及凋亡的影响 | 第28-29页 |
1.2.4 LiCl对hUC-MSCs衰老的影响 | 第29-30页 |
1.2.5 LiCl对hUC-MSCs向神经分化的影响 | 第30-31页 |
1.2.6 LiCl对hUC-MSCs Wnt/β-catenin信号通路的影响 | 第31-32页 |
1.3 讨论 | 第32-33页 |
1.4 小结 | 第33-35页 |
第二部分 氯化锂联合hUC-MSCS移植对阿尔茨海默鼠的干预作用 | 第35-50页 |
前言 | 第35-36页 |
2.1 材料与方法 | 第36-41页 |
2.1.1 动物来源 | 第36页 |
2.1.2 主要试剂 | 第36-37页 |
2.1.3 APP转基因鼠的鉴定、分组及处理 | 第37-38页 |
2.1.4 Morris水迷宫 | 第38页 |
2.1.5 血清SOD、MDA的检测 | 第38-39页 |
2.1.6 免疫组化 | 第39-40页 |
2.1.7 qRT-PCR | 第40-41页 |
2.1.8 Western Blot | 第41页 |
2.1.9 统计学分析 | 第41页 |
2.2 结果 | 第41-46页 |
2.2.1 APP+转基因小鼠的鉴定 | 第41页 |
2.2.2 小鼠的行为学改变 | 第41-42页 |
2.2.3 血清中SOD的活性及MDA的含量 | 第42-43页 |
2.2.4 hUC-MSCs在脑中的存活 | 第43页 |
2.2.5 脑中神经标记物 β-III Tubulin的表达 | 第43-44页 |
2.2.6 脑中tau、ptau的表达 | 第44页 |
2.2.7 海马组织中神经营养因子的表达 | 第44-45页 |
2.2.8 海马组织中衰老相关基因的表达 | 第45-46页 |
2.2.9 海马组织中Wnt/β-catenin信号通路的表达 | 第46页 |
2.3 讨论 | 第46-48页 |
2.4 小结 | 第48-50页 |
结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
综述 Wnt信号通路与神经系统及阿尔茨海默病 | 第57-74页 |
参考文献 | 第67-74页 |
主要设备 | 第74-76页 |
个人简历 | 第76页 |
硕士期间发表的文章 | 第76-77页 |
致谢 | 第77页 |