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河北秦皇岛和吉林向海地区野鸟禽流感病毒的监测研究

摘要第4-7页
Abstract第7-9页
1 绪论第18-33页
    1.1 引言第18页
    1.2 禽流感概况第18-21页
        1.2.1 禽流感的病原学第18-19页
        1.2.2 禽流感病毒的血凝活性第19页
        1.2.3 禽流感的历史第19-21页
    1.3 禽流感病毒的分子生物学特性第21-28页
        1.3.1 禽流感病毒形态结构第21-22页
        1.3.2 禽流感病毒基因组的结构及其编码蛋白的功能第22-27页
        1.3.3 禽流感病毒的复制第27页
        1.3.4 禽流感病毒的抗原变异第27-28页
    1.4 禽流感的流行病学第28-31页
        1.4.1 禽流感病毒的宿主第28页
        1.4.2 禽流感的传播第28-29页
        1.4.3 人感染禽流感H7N9、H10N8第29-30页
        1.4.4 禽流感在世界各地野鸟中的分布情况第30-31页
    1.5 本研究的目的和意义第31-33页
2 实验1 秦皇岛地区野生鸟类禽流感病毒的监测研究第33-46页
    2.1 实验材料和实验仪器第33-36页
        2.1.1 实验样品第33-35页
        2.1.2 实验仪器第35页
        2.1.3 实验试剂第35页
        2.1.4 SPF鸡胚及SPF鸡红细胞第35-36页
    2.2 实验方法第36-39页
        2.2.1 样品采集第36页
        2.2.2 样品处理第36页
        2.2.3 病毒分离第36页
        2.2.4 凝实验第36-37页
        2.2.5 RT-PCR实验第37-38页
        2.2.6 AIV血凝素亚型及神经氨酸酶亚型的鉴定第38-39页
    2.3 实验结果第39-42页
        2.3.1 病毒分离结果第39-40页
        2.3.2 病毒亚型鉴定结果第40-41页
        2.3.3 HA和NA亚型分布第41-42页
    2.4 讨论第42-45页
        2.4.1 不同年份病毒分离率差异较大,分离率总体水平较低第42-43页
        2.4.2 不同季节病毒分离率不同,春季分离率最高,秋、冬季毒株亚型最丰富第43页
        2.4.3 不同宿主病毒分离率不同,鸻形目和雁形目分离率相对较高第43-44页
        2.4.4 不同监测点病毒分离率不同,七里海湿地公园分离率最高第44页
        2.4.5 秦皇岛地区流感病毒的优势亚型第44页
        2.4.6 七里海红嘴鸥死亡事件第44-45页
    2.5 本章小结第45-46页
3 实验2吉林向海地区野生鸟类禽流感病毒的监测研究第46-59页
    3.1 实验材料和实验仪器第46-47页
        3.1.1 实验样品第46-47页
        3.1.2 实验仪器第47页
        3.1.3 实验试剂第47页
        3.1.4 SPF鸡胚及SPF鸡红细胞第47页
    3.2 实验方法第47-48页
        3.2.1 样品采集第47页
        3.2.2 样品处理第47-48页
        3.2.3 病毒分离第48页
        3.2.4 血凝实验第48页
        3.2.5 RT-PCR实验第48页
        3.2.6 AIV血凝素亚型及神经氨酸酶亚型的鉴定第48页
    3.3 实验结果第48-53页
        3.3.1 病毒分离结果第48-49页
        3.3.2 病毒亚型鉴定结果第49-52页
        3.3.3 HA和NA亚型分布第52-53页
    3.4 讨论第53-57页
        3.4.1 不同年份病毒分离率差异较大,分离率总体水平较高第53-54页
        3.4.2 不同季节病毒分离率不同,秋季分离率最高第54-55页
        3.4.3 不同宿主病毒分离率不同,雁形目鸟类分离到的毒株最多,病毒亚型最丰富第55-56页
        3.4.4 咽拭子和泄殖腔拭子的流感病毒分离率没有明显差异第56页
        3.4.5 吉林向海地区流感病毒的优势亚型第56-57页
        3.4.6 秦皇岛和吉林向海地区流感病毒分离率差异的主要原因第57页
    3.5 本章小结第57-59页
4 实验3代表性分离株的基因克隆及序列分析第59-170页
    4.1 实验材料和实验仪器第59-61页
        4.1.1 实验样品第59-60页
        4.1.2 实验仪器第60-61页
        4.1.3 实验试剂第61页
    4.2 实验方法第61-64页
        4.2.1 RT-PCR实验第61页
        4.2.2 PCR产物回收和纯化第61-62页
        4.2.3 PCR回收产物鉴定第62页
        4.2.4 连接第62页
        4.2.5 转化第62-63页
        4.2.6 质粒提取第63页
        4.2.7 重组质粒鉴定第63页
        4.2.8 序列测定与分析第63-64页
    4.3 实验结果第64-126页
        4.3.1 病毒基因测序结果第64-65页
        4.3.2 同源性比较结果第65-90页
        4.3.3 进化树第90-114页
        4.3.4 血凝素蛋白裂解位点第114页
        4.3.5 糖基化位点分析第114-124页
        4.3.6 受体结合位点第124-126页
    4.4 讨论第126-169页
        4.4.1 H1基因的分子遗传分析第126-128页
        4.4.2 H2基因的分子遗传分析第128-130页
        4.4.3 H3基因的分子遗传分析第130-132页
        4.4.4 H4基因的分子遗传分析第132-133页
        4.4.5 H5基因的分子遗传分析第133-136页
        4.4.6 H6基因的分子遗传分析第136-138页
        4.4.7 H7基因的分子遗传分析第138-140页
        4.4.8 H9基因的分子遗传分析第140-142页
        4.4.9 H10基凶的分子遗传分析第142-144页
        4.4.10 H13基因的分子遗传分析第144-146页
        4.4.11 H16基因的分子遗传分析第146-148页
        4.4.12 N1基因的分子遗传分析第148-149页
        4.4.13 N2基因的分子遗传分析第149-151页
        4.4.14 N3基因的分子遗传分析第151-152页
        4.4.15 N6基因的分子遗传分析第152-154页
        4.4.16 N7基因的分子遗传分析第154-155页
        4.4.17 N8基因的分子遗传分析第155-157页
        4.4.18 N9基因的分子遗传分析第157-158页
        4.4.19 PB2基因的分子遗传分析第158-160页
        4.4.20 PB1基因的分子遗传分析第160-161页
        4.4.21 PA基因的分子遗传分析第161-163页
        4.4.22 NP基因的分子遗传分析第163-165页
        4.4.23 M基因的分子遗传分析第165-166页
        4.4.24 NS基因的分子遗传分析第166-169页
    4.5 本章小结第169-170页
结论第170-171页
参考文献第171-183页
附录A 秦皇岛地区采样明细表第183-185页
附录B 吉林向海地区采样明细表第185-187页
攻读学位期间发表的学术论文第187-188页
致谢第188-189页
个人简历第189-190页

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