| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 有机小分子荧光探针平台 | 第12-17页 |
| 1.1.1 香豆素类荧光探针平台 | 第12-14页 |
| 1.1.2 罗丹明类荧光探针平台 | 第14-16页 |
| 1.1.3 荧光素类荧光探针平台 | 第16-17页 |
| 1.2 荧光共振能量转移原理简介 | 第17-20页 |
| 1.2.1 荧光共振能量转移(FRET)产生的条件 | 第17-18页 |
| 1.2.2 荧光共振能量转移(FRET)产生的机理 | 第18-19页 |
| 1.2.3 构建基于FRET的探针平台的条件 | 第19页 |
| 1.2.4 基于FRET的探针平台的应用 | 第19-20页 |
| 1.3 双光子基本原理 | 第20-25页 |
| 1.3.1 双光子吸收简介 | 第20-21页 |
| 1.3.2 双光子成像的优点 | 第21-22页 |
| 1.3.3 双光子有机染料 | 第22-23页 |
| 1.3.4 双光子有机小分子荧光探针的应用 | 第23-25页 |
| 1.4 本论文的选题依据和研究内容 | 第25-28页 |
| 第2章 构建基于苯并吡喃-荧光素杂交的FRET型小分子双光子比率探针平台 | 第28-34页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-31页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.2 苯并吡喃-荧光素杂交的FRET型双光子比率探的合成与表征 | 第29-30页 |
| 2.2.3 光谱表征 | 第30页 |
| 2.2.4 细胞双光子荧光成像实验 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-33页 |
| 2.3.1 探针平台的设计原理 | 第31页 |
| 2.3.2 可行性研究 | 第31-33页 |
| 2.3.3 细胞成像 | 第33页 |
| 2.4 小结 | 第33-34页 |
| 第3章 苯并吡喃-荧光素杂交的FRET型小分子双光子比率探针用于生物体内次硝酸(HNO)的检测 | 第34-48页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验部分 | 第35-37页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第35-36页 |
| 3.2.2 量子产率及双光子活性吸收面积测定 | 第36页 |
| 3.2.3 细胞毒性及双光子细胞成像 | 第36-37页 |
| 3.2.4 双光子组织成像 | 第37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-46页 |
| 3.3.1 探针的设计原理 | 第37-38页 |
| 3.3.2 可行性分析 | 第38-39页 |
| 3.3.3 探针光谱表征 | 第39-40页 |
| 3.3.4 不同pH对探针响应性能的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 荧光动力学实验 | 第41页 |
| 3.3.6 选择性考察 | 第41-42页 |
| 3.3.7 生物成像分析 | 第42-46页 |
| 3.4 小结 | 第46-48页 |
| 第4章 苯并吡喃-荧光素杂交的FRET型小分子双光子比率探针用于检测H_2S_n | 第48-57页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验部分 | 第49-50页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第49页 |
| 4.2.2 探针的合成与表征 | 第49-50页 |
| 4.2.3 细胞毒性实验 | 第50页 |
| 4.2.4 双光子细胞成像 | 第50页 |
| 4.2.5 双光子组织成像 | 第50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-56页 |
| 4.3.1 探针的设计原理 | 第50-51页 |
| 4.3.2 探针最佳响应条件的选择 | 第51-52页 |
| 4.3.3 探针滴定曲线 | 第52-53页 |
| 4.3.4 pH对探针响应的影响 | 第53页 |
| 4.3.5 选择性考察 | 第53-54页 |
| 4.3.6 细胞毒性考察 | 第54-55页 |
| 4.3.7 生物成像分析 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 结论与展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文 | 第67-68页 |
| 附录B 化合物的MS和NMR谱图 | 第68-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
