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基于整体柱的微分离分析方法研究及其在酸性植物激素检测中的应用

摘要第5-7页
Abstract第7-9页
第一章 绪论第16-51页
    1.1 酸性植物激素简介第16-19页
        1.1.1 酸性植物激素定义第16页
        1.1.2 酸性植物激素的生理功能与意义第16-19页
    1.2 酸性植物激素检测方法概述第19-20页
    1.3 适用于酸性植物激素色谱-质谱分析的前处理技术第20-31页
        1.3.1 提取第21-22页
        1.3.2 纯化与富集第22-31页
            1.3.2.1 液-液萃取第23-26页
            1.3.2.2 固相萃取第26-29页
            1.3.2.3 其它萃取技术第29-31页
            1.3.2.4 多种前处理技术组合第31页
    1.4 基于色谱-质谱联用技术的酸性植物激素分析方法第31-40页
        1.4.1 CG-MS第31-33页
        1.4.2 CE-MS第33-37页
        1.4.3 LC-MS第37-40页
    1.5 适用于酸性植物激素色谱分离的整体柱固定相第40-45页
    1.6 适用于酸性植物激素ESI-MS检测的羧酸衍生化反应第45-48页
    1.7 论文选题依据、意义及研究内容第48-51页
第二章 衍生化技术与CE-MS联用对水稻中的多种酸性植物激素全分析第51-77页
    2.1 前言第51-53页
    2.2 实验部分第53-56页
        2.2.1 试剂第53页
        2.2.2 衍生化试剂BTA的合成第53-54页
        2.2.3 氨基键合毛细管的制备第54-55页
        2.2.4 植物样品的制备与前处理第55页
        2.2.5 衍生化的酸性植物激素CE-MS分析第55-56页
    2.3 结果与讨论第56-76页
        2.3.1 衍生化条件优化第56-61页
        2.3.2 酸性植物激素CE-MS分离第61-67页
        2.3.3 FASI第67-68页
        2.3.4 重现性第68-69页
        2.3.5 方法学考察第69-72页
            2.3.5.1 工作曲线和检出限第69页
            2.3.5.2 方法的精密度和准确性第69-72页
        2.3.6 水稻中酸性植物激素全分析第72-76页
    2.4 结论第76-77页
第三章 聚(甲基丙烯酸-乙二醇二甲基丙烯酸酯)整体柱的制备及其在酸性植物激素分离上的应用第77-101页
    3.1 前言第77-79页
    3.2 实验部分第79-83页
        3.2.1 试剂第79-80页
        3.2.2 Poly(MAA-co-EDMA)整体柱的制备第80-81页
        3.2.3 整体柱的表征第81-82页
        3.2.4 毛细管液相色谱-质谱第82-83页
    3.3 结果与讨论第83-100页
        3.3.1 整体柱制备第83-89页
            3.3.1.1 亲水致孔体系下整体柱优化第83-86页
            3.3.1.2 疏水致孔体系下的整体柱配比优化第86-89页
        3.3.2 整体柱表征第89-93页
        3.3.3 极性致孔体系制备的poly(MAA-co-EDMA)色谱分离性能评价第93-96页
            3.3.3.1 核苷的分离第93-94页
            3.3.3.2 苯胺的分离第94-96页
            3.3.3.3 苯甲酸的分离第96页
        3.3.4 重现性第96-97页
        3.3.5 酸性植物激素衍生化产物的分离第97-100页
    3.4 结论第100-101页
第四章 在线富集-毛细管液相色谱-质谱方法用于少量植物样品中酸性植物激素全分析第101-125页
    4.1 前言第101-102页
    4.2 实验部分第102-107页
        4.2.1 试剂第102-103页
        4.2.2 植物样品的制备与前处理第103-104页
        4.2.3 整体柱的制备第104-106页
        4.2.4 毛细管液相色谱-质谱第106-107页
    4.3 结果与讨论第107-124页
        4.3.1 在线富集系统的构建第107-114页
            4.3.1.1 在线富集材料的选择第108-110页
            4.3.1.2 在线富集条件优化第110-114页
        4.3.2 酸性植物激素纯化第114-118页
        4.3.3 方法学建立第118-123页
            4.3.3.1 工作曲线、定量限与检测限第118-119页
            4.3.3.2 水稻样品用量第119-120页
            4.3.3.3 方法的精密度和准确性第120-123页
        4.3.4 酸性植物激素检测第123-124页
    4.4 结论第124-125页
第五章 基于整体柱毛细管的毛细管液相-质谱联用方法测定植物体内GA3氧化酶活性第125-148页
    5.1 前言第125-127页
    5.2 实验部分第127-131页
        5.2.1 试剂第127-128页
        5.2.2 大肠杆菌中GA3氧化酶的表达第128页
        5.2.3 植物样品的制备第128-129页
        5.2.4 酶反应与产物的提取第129-130页
        5.2.5 毛细管液相-质谱第130-131页
    5.3 结果与讨论第131-146页
        5.3.1 GA3氧化酶催化底物与产物的分离第131-135页
        5.3.2 ESI-MS条件优化第135-137页
        5.3.3 大体积进样第137-139页
        5.3.4 方法学建立第139-143页
            5.3.4.1 工作曲线、定量限与检测限第139-140页
            5.3.4.2 酶反应产物的纯化第140页
            5.3.4.3 方法的准确性和精密度第140-143页
        5.3.5 GA氧化酶活性的测定第143-146页
            5.3.5.1 大肠杆菌表达GA氧化酶第143页
            5.3.5.2 植物体内GA3氧化酶活性测定第143-146页
    5.4 结论第146-148页
第六章 总结与展望第148-151页
附录第151-199页
    含有磺酸根与辛基的杂化硅胶整体柱的制备及其在饮料中咖啡因与茶碱检测中的应用第151-176页
        7.1 前言第151-153页
        7.2 实验部分第153-156页
            7.2.1 试剂第153页
            7.2.2 整体柱的制备第153-154页
            7.2.3 饮料样品的制备第154页
            7.2.4 整体柱表征第154-155页
            7.2.5 CEC第155-156页
        7.3 结果与讨论第156-175页
            7.3.1 杂化硅胶整体柱的制备第156-159页
            7.3.2 整体柱表征第159-160页
            7.3.3 电渗流第160-161页
            7.3.4 色谱动力学第161-163页
            7.3.5 苯同系物的分离第163-165页
            7.3.6 苯胺衍生物的分离第165-168页
            7.3.7 苯甲酸衍生物的分离第168-169页
            7.3.8 饮料中TP与CA检测应用第169-175页
                7.3.8.1 工作曲线、定量限与检测限第171-172页
                7.3.8.2 饮料样品中CA与TP的测定第172-175页
        7.4 结论第175-176页
    亲水毛细管色谱-飞行时间质谱联用检测肝癌组织中的5-甲基胞苷与5-羟甲基胞苷第176-199页
        8.1 前言第176-178页
        8.2 实验部分第178-180页
            8.2.1 试剂第178页
            8.2.2 生物样品第178页
            8.2.3 毛细管液相-质谱第178-180页
        8.3 结果与讨论第180-198页
            8.3.1 核苷的ESI-qTOF-MS检测第180-182页
            8.3.2 核苷的亲水分离第182-186页
            8.3.3 在线富集第186-190页
            8.3.4 方法学考察第190-196页
                8.3.4.1 工作曲线、定量限与检测限第190-191页
                8.3.4.2 方法的准确性与重现性第191-196页
            8.3.5 人肝脏组织中DNA甲基化与羟甲基化检测第196-198页
        8.4 结论第198-199页
参考文献第199-233页
作者在读博士学位期间已发表和待发表的论文第233-237页
致谢第237-238页

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