摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第16-51页 |
1.1 酸性植物激素简介 | 第16-19页 |
1.1.1 酸性植物激素定义 | 第16页 |
1.1.2 酸性植物激素的生理功能与意义 | 第16-19页 |
1.2 酸性植物激素检测方法概述 | 第19-20页 |
1.3 适用于酸性植物激素色谱-质谱分析的前处理技术 | 第20-31页 |
1.3.1 提取 | 第21-22页 |
1.3.2 纯化与富集 | 第22-31页 |
1.3.2.1 液-液萃取 | 第23-26页 |
1.3.2.2 固相萃取 | 第26-29页 |
1.3.2.3 其它萃取技术 | 第29-31页 |
1.3.2.4 多种前处理技术组合 | 第31页 |
1.4 基于色谱-质谱联用技术的酸性植物激素分析方法 | 第31-40页 |
1.4.1 CG-MS | 第31-33页 |
1.4.2 CE-MS | 第33-37页 |
1.4.3 LC-MS | 第37-40页 |
1.5 适用于酸性植物激素色谱分离的整体柱固定相 | 第40-45页 |
1.6 适用于酸性植物激素ESI-MS检测的羧酸衍生化反应 | 第45-48页 |
1.7 论文选题依据、意义及研究内容 | 第48-51页 |
第二章 衍生化技术与CE-MS联用对水稻中的多种酸性植物激素全分析 | 第51-77页 |
2.1 前言 | 第51-53页 |
2.2 实验部分 | 第53-56页 |
2.2.1 试剂 | 第53页 |
2.2.2 衍生化试剂BTA的合成 | 第53-54页 |
2.2.3 氨基键合毛细管的制备 | 第54-55页 |
2.2.4 植物样品的制备与前处理 | 第55页 |
2.2.5 衍生化的酸性植物激素CE-MS分析 | 第55-56页 |
2.3 结果与讨论 | 第56-76页 |
2.3.1 衍生化条件优化 | 第56-61页 |
2.3.2 酸性植物激素CE-MS分离 | 第61-67页 |
2.3.3 FASI | 第67-68页 |
2.3.4 重现性 | 第68-69页 |
2.3.5 方法学考察 | 第69-72页 |
2.3.5.1 工作曲线和检出限 | 第69页 |
2.3.5.2 方法的精密度和准确性 | 第69-72页 |
2.3.6 水稻中酸性植物激素全分析 | 第72-76页 |
2.4 结论 | 第76-77页 |
第三章 聚(甲基丙烯酸-乙二醇二甲基丙烯酸酯)整体柱的制备及其在酸性植物激素分离上的应用 | 第77-101页 |
3.1 前言 | 第77-79页 |
3.2 实验部分 | 第79-83页 |
3.2.1 试剂 | 第79-80页 |
3.2.2 Poly(MAA-co-EDMA)整体柱的制备 | 第80-81页 |
3.2.3 整体柱的表征 | 第81-82页 |
3.2.4 毛细管液相色谱-质谱 | 第82-83页 |
3.3 结果与讨论 | 第83-100页 |
3.3.1 整体柱制备 | 第83-89页 |
3.3.1.1 亲水致孔体系下整体柱优化 | 第83-86页 |
3.3.1.2 疏水致孔体系下的整体柱配比优化 | 第86-89页 |
3.3.2 整体柱表征 | 第89-93页 |
3.3.3 极性致孔体系制备的poly(MAA-co-EDMA)色谱分离性能评价 | 第93-96页 |
3.3.3.1 核苷的分离 | 第93-94页 |
3.3.3.2 苯胺的分离 | 第94-96页 |
3.3.3.3 苯甲酸的分离 | 第96页 |
3.3.4 重现性 | 第96-97页 |
3.3.5 酸性植物激素衍生化产物的分离 | 第97-100页 |
3.4 结论 | 第100-101页 |
第四章 在线富集-毛细管液相色谱-质谱方法用于少量植物样品中酸性植物激素全分析 | 第101-125页 |
4.1 前言 | 第101-102页 |
4.2 实验部分 | 第102-107页 |
4.2.1 试剂 | 第102-103页 |
4.2.2 植物样品的制备与前处理 | 第103-104页 |
4.2.3 整体柱的制备 | 第104-106页 |
4.2.4 毛细管液相色谱-质谱 | 第106-107页 |
4.3 结果与讨论 | 第107-124页 |
4.3.1 在线富集系统的构建 | 第107-114页 |
4.3.1.1 在线富集材料的选择 | 第108-110页 |
4.3.1.2 在线富集条件优化 | 第110-114页 |
4.3.2 酸性植物激素纯化 | 第114-118页 |
4.3.3 方法学建立 | 第118-123页 |
4.3.3.1 工作曲线、定量限与检测限 | 第118-119页 |
4.3.3.2 水稻样品用量 | 第119-120页 |
4.3.3.3 方法的精密度和准确性 | 第120-123页 |
4.3.4 酸性植物激素检测 | 第123-124页 |
4.4 结论 | 第124-125页 |
第五章 基于整体柱毛细管的毛细管液相-质谱联用方法测定植物体内GA3氧化酶活性 | 第125-148页 |
5.1 前言 | 第125-127页 |
5.2 实验部分 | 第127-131页 |
5.2.1 试剂 | 第127-128页 |
5.2.2 大肠杆菌中GA3氧化酶的表达 | 第128页 |
5.2.3 植物样品的制备 | 第128-129页 |
5.2.4 酶反应与产物的提取 | 第129-130页 |
5.2.5 毛细管液相-质谱 | 第130-131页 |
5.3 结果与讨论 | 第131-146页 |
5.3.1 GA3氧化酶催化底物与产物的分离 | 第131-135页 |
5.3.2 ESI-MS条件优化 | 第135-137页 |
5.3.3 大体积进样 | 第137-139页 |
5.3.4 方法学建立 | 第139-143页 |
5.3.4.1 工作曲线、定量限与检测限 | 第139-140页 |
5.3.4.2 酶反应产物的纯化 | 第140页 |
5.3.4.3 方法的准确性和精密度 | 第140-143页 |
5.3.5 GA氧化酶活性的测定 | 第143-146页 |
5.3.5.1 大肠杆菌表达GA氧化酶 | 第143页 |
5.3.5.2 植物体内GA3氧化酶活性测定 | 第143-146页 |
5.4 结论 | 第146-148页 |
第六章 总结与展望 | 第148-151页 |
附录 | 第151-199页 |
含有磺酸根与辛基的杂化硅胶整体柱的制备及其在饮料中咖啡因与茶碱检测中的应用 | 第151-176页 |
7.1 前言 | 第151-153页 |
7.2 实验部分 | 第153-156页 |
7.2.1 试剂 | 第153页 |
7.2.2 整体柱的制备 | 第153-154页 |
7.2.3 饮料样品的制备 | 第154页 |
7.2.4 整体柱表征 | 第154-155页 |
7.2.5 CEC | 第155-156页 |
7.3 结果与讨论 | 第156-175页 |
7.3.1 杂化硅胶整体柱的制备 | 第156-159页 |
7.3.2 整体柱表征 | 第159-160页 |
7.3.3 电渗流 | 第160-161页 |
7.3.4 色谱动力学 | 第161-163页 |
7.3.5 苯同系物的分离 | 第163-165页 |
7.3.6 苯胺衍生物的分离 | 第165-168页 |
7.3.7 苯甲酸衍生物的分离 | 第168-169页 |
7.3.8 饮料中TP与CA检测应用 | 第169-175页 |
7.3.8.1 工作曲线、定量限与检测限 | 第171-172页 |
7.3.8.2 饮料样品中CA与TP的测定 | 第172-175页 |
7.4 结论 | 第175-176页 |
亲水毛细管色谱-飞行时间质谱联用检测肝癌组织中的5-甲基胞苷与5-羟甲基胞苷 | 第176-199页 |
8.1 前言 | 第176-178页 |
8.2 实验部分 | 第178-180页 |
8.2.1 试剂 | 第178页 |
8.2.2 生物样品 | 第178页 |
8.2.3 毛细管液相-质谱 | 第178-180页 |
8.3 结果与讨论 | 第180-198页 |
8.3.1 核苷的ESI-qTOF-MS检测 | 第180-182页 |
8.3.2 核苷的亲水分离 | 第182-186页 |
8.3.3 在线富集 | 第186-190页 |
8.3.4 方法学考察 | 第190-196页 |
8.3.4.1 工作曲线、定量限与检测限 | 第190-191页 |
8.3.4.2 方法的准确性与重现性 | 第191-196页 |
8.3.5 人肝脏组织中DNA甲基化与羟甲基化检测 | 第196-198页 |
8.4 结论 | 第198-199页 |
参考文献 | 第199-233页 |
作者在读博士学位期间已发表和待发表的论文 | 第233-237页 |
致谢 | 第237-238页 |