| 摘要 | 第12-14页 |
| ABSTRACT | 第14-16页 |
| 符号说明 | 第17-18页 |
| 第一章 白花丹参的研究综述 | 第18-33页 |
| 1.1 白花丹参化学成分研究 | 第18-23页 |
| 1.1.1 丹参酮类化合物 | 第18-21页 |
| 1.1.2 酚酸类成分 | 第21-23页 |
| 1.1.3 其他类 | 第23页 |
| 1.2 白花丹参药理学作用研究 | 第23-27页 |
| 1.2.1 对心血管系统的作用 | 第23-24页 |
| 1.2.2 对脑的保护作用 | 第24-25页 |
| 1.2.3 对神经系统的保护作用 | 第25-26页 |
| 1.2.4 抗糖尿病的作用 | 第26-27页 |
| 1.2.5 抗肿瘤作用 | 第27页 |
| 1.2.6 其他药理作用 | 第27页 |
| 1.3 总结 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 第二章 白花丹参中丹参酮类化合物的免疫抗炎活性评价 | 第33-49页 |
| 2.1 前言 | 第33-35页 |
| 2.2 实验材料 | 第35-36页 |
| 2.2.1 细胞系 | 第35页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第36页 |
| 2.3 试验方法 | 第36-40页 |
| 2.3.1 细胞复苏及培养 | 第36页 |
| 2.3.2 MTT法检测THP-1细胞株活力 | 第36-37页 |
| 2.3.3 ELISA法检测THP-1细胞培养上清液中IL-1β、IL-8及TNF-α的表达水平 | 第37-38页 |
| 2.3.4 qRT-PCR法检测THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-8及TNF-α的mRNA表达水平 | 第38-40页 |
| 2.3.4.1 目的基因与内参基因的引物序列 | 第38页 |
| 2.3.4.2 总RNA的提取 | 第38-39页 |
| 2.3.4.3 逆转录合成cDNA链 | 第39页 |
| 2.3.4.4 荧光定量PCR | 第39-40页 |
| 2.3.5 数据分析 | 第40页 |
| 2.4 实验结果 | 第40-44页 |
| 2.4.1 PMA诱导THP-1细胞分化形态变化 | 第40页 |
| 2.4.2 MTT实验结果 | 第40页 |
| 2.4.3 丹参酮类化合物对LPS诱导的THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-8及TNF-α的分泌的影响 | 第40-42页 |
| 2.4.4 丹参酮类化合物对LPS诱导的THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-8及TNF-α的mRNA表达的影响 | 第42-44页 |
| 2.5 讨论与总结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 第三章 白花丹参中酚酸类化合物的抗炎活性评价及机制研究 | 第49-64页 |
| 3.1 前言 | 第49-50页 |
| 3.2 实验材料 | 第50-52页 |
| 3.2.1 细胞系 | 第50页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 3.2.3 主要试剂的配制 | 第51-52页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第52页 |
| 3.3 实验方法 | 第52-55页 |
| 3.3.1 细胞复苏及培养 | 第52页 |
| 3.3.2 MTT法检测THP-1细胞株活力 | 第52页 |
| 3.3.3 ELISA法检测THP-1细胞培养上清液中IL-1β、IL-6及TNF-α的表达水平 | 第52页 |
| 3.3.4 qRT-PCR法检测THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-6及TNF-α的mRNA表达水平 | 第52-53页 |
| 3.3.4.1 目的基因与内参基因的引物序列 | 第52-53页 |
| 3.3.4.2 总RNA的提取 | 第53页 |
| 3.3.4.3 逆转录合成cDNA链 | 第53页 |
| 3.3.4.4 荧光定量PCR | 第53页 |
| 3.3.5 Western blot法检测THP-1细胞中TLR4、p65、p-p65、IκBα、p-IκBα的蛋白表达水平 | 第53-55页 |
| 3.3.5.1 总蛋白的提取 | 第53页 |
| 3.3.5.2 BCA蛋白浓度测定 | 第53-54页 |
| 3.3.5.3 SDS-PAGE电泳 | 第54-55页 |
| 3.3.5.4 转膜 | 第55页 |
| 3.3.5.5 封闭 | 第55页 |
| 3.3.5.6 孵育抗体 | 第55页 |
| 3.3.5.7 显影 | 第55页 |
| 3.3.6 数据分析 | 第55页 |
| 3.4 实验结果 | 第55-60页 |
| 3.4.1 MTT实验结果 | 第55页 |
| 3.4.2 酚酸类化合物对LPS诱导的THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-6及TNF-α的分泌的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.3 酚酸类化合物对LPS诱导的THP-1细胞中炎症因子IL-1β、IL-6及TNF-α的mRNA表达的影响 | 第57-58页 |
| 3.4.4 Sal B与化合物8对LPS诱导的THP-1细胞中p65、p-p65、IκBα、p-IκBα蛋白表达的影响 | 第58-59页 |
| 3.4.5 Sal B与化合物8对LPS诱导的THP-1细胞中TLR4蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
| 3.5 讨论与总结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 第四章 丹参酮ⅡA抗血栓闭塞性脉管炎的实验研究 | 第64-77页 |
| 4.1 前言 | 第64-65页 |
| 4.2 实验材料 | 第65-66页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第65页 |
| 4.2.2 实验用药及材料 | 第65页 |
| 4.2.3 主要试剂的配制 | 第65-66页 |
| 4.2.4 主要仪器 | 第66页 |
| 4.3 实验方法 | 第66-68页 |
| 4.3.1 实验动物分组及模型的建立 | 第66-67页 |
| 4.3.2 给药组处理 | 第67页 |
| 4.3.3 体征变化观察 | 第67页 |
| 4.3.4 大鼠样本采集 | 第67页 |
| 4.3.5 ELISA法检测血浆中ET-1、TXB_2、6-K-PGF_(1α)蛋白水平 | 第67页 |
| 4.3.6 常规HE染色病理观察 | 第67-68页 |
| 4.3.7 数据分析 | 第68页 |
| 4.4 实验结果 | 第68-72页 |
| 4.4.1 TAO模型的建立结果及病变肢体的外观变化 | 第68-69页 |
| 4.4.2 实验大鼠病变分级结果 | 第69-70页 |
| 4.4.3 HE染色结果 | 第70-71页 |
| 4.4.4 丹参酮ⅡA对TAO大鼠血浆中ET-1、TXB_2、6-K-PGF_（1α）含量的影响 | 第71-72页 |
| 4.5 讨论与总结 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第78-79页 |
| 附录：细胞活力检测实验结果 | 第79-81页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第81页 |
