| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一部分：PM2.5 对HUVEC细胞的氧化损伤研究 | 第16-34页 |
| 1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2 实验方法 | 第17-23页 |
| 2.1 PM2.5 的采集 | 第17页 |
| 2.2 PM2.5 的提取 | 第17页 |
| 2.3 PM2.5 的配制与染毒方式 | 第17-18页 |
| 2.4 PM2.5 粒径分析与电镜观察 | 第18页 |
| 2.5 细胞复苏与培养 | 第18页 |
| 2.6 CCK-8 法测定细胞存活率 | 第18-19页 |
| 2.7 细胞内活性氧（ROS）含量测定与荧光显微镜观察 | 第19页 |
| 2.8 细胞总SOD活性测定 | 第19-20页 |
| 2.9 细胞GPx活性测定 | 第20-21页 |
| 2.10 细胞内MDA含量测定 | 第21页 |
| 2.11 单细胞凝胶电泳实验测细胞拖尾率 | 第21-23页 |
| 3 统计学分析 | 第23页 |
| 4 实验结果 | 第23-31页 |
| 4.1 PM2.5 粒径分布与微观特征 | 第23-25页 |
| 4.2 PM2.5 对HUVEC细胞存活率的影响 | 第25-26页 |
| 4.3 PM2.5 对HUVEC细胞内ROS水平的影响 | 第26-27页 |
| 4.4 PM2.5 对HUVEC细胞MDA水平及GPx和SOD活力的影响 | 第27-28页 |
| 4.5 PM2.5 对HUVEC细胞拖尾率的影响 | 第28-30页 |
| 4.6 NAC与PM2.5 单独或共同作用对HUVEC细胞存活率、ROS影响 | 第30-31页 |
| 5 讨论 | 第31-33页 |
| 6 小结 | 第33-34页 |
| 第二部分：白藜芦醇干预对PM2.5 致HUVEC细胞氧化损伤的影响 | 第34-48页 |
| 1 实验材料 | 第34页 |
| 1.1 细胞株 | 第34页 |
| 1.2 主要试剂及实验耗材 | 第34页 |
| 2 实验方法 | 第34-40页 |
| 2.1 CCK-8 法测定细胞存活率 | 第34-35页 |
| 2.2 细胞内活性氧（ROS）含量测定 | 第35页 |
| 2.3 细胞内MDA含量测定 | 第35-36页 |
| 2.4 Western Blot实验细胞蛋白的提取 | 第36页 |
| 2.5 Western Blot实验细胞核蛋白的提取 | 第36页 |
| 2.6 Western Blot实验蛋白的定量与变性 | 第36-37页 |
| 2.7 Western Blot实验检测蛋白含量 | 第37-40页 |
| 3 统计学分析 | 第40页 |
| 4 实验结果 | 第40-45页 |
| 4.1 RSV对HUVEC细胞存活率的影响 | 第40-41页 |
| 4.2 RSV干预对PM2.5 致HUVEC细胞氧化损伤的影响 | 第41-43页 |
| 4.3 RSV干预对Nrf2核蛋白、SOD-2 细胞蛋白含量的影响 | 第43-45页 |
| 5 讨论 | 第45-47页 |
| 6 小结 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 个人简历 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
