| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 植物抗氧化酶系统 | 第14-16页 |
| 1.1.1 活性氧的产生 | 第14页 |
| 1.1.2 植物抗氧化酶类 | 第14-16页 |
| 1.1.3 抗氧化酶系统与外界环境的关系 | 第16页 |
| 1.2 植物中花青素的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.1 类黄酮简介 | 第16-17页 |
| 1.2.2 植物体内花青素的研究 | 第17-20页 |
| 1.2.3 环境对花青素合成代谢的影响 | 第20页 |
| 1.3 植物体中GR、F3H基因的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.3.1 GR基因研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3.2 F3H基因研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 启动子概述 | 第22-24页 |
| 1.4.1 植物启动子的结构特征 | 第22页 |
| 1.4.2 植物启动子类型 | 第22-23页 |
| 1.4.3 启动子中与胁迫相关的顺式作用元件及转录因子 | 第23-24页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第24-26页 |
| 第二章 材料和方法 | 第26-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.1 实验材料与培养 | 第26页 |
| 2.1.2 材料处理 | 第26页 |
| 2.2 试剂及仪器 | 第26-29页 |
| 2.2.1 菌株与载体 | 第26页 |
| 2.2.2 酶及生化试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.3 实验所用仪器 | 第27页 |
| 2.2.4 PCR引物 | 第27-29页 |
| 2.3 柠条GR、F3H基因的克隆 | 第29-32页 |
| 2.3.1 柠条总RNA提取 | 第29页 |
| 2.3.2 柠条GR、F3H基因中间片段的克隆 | 第29-30页 |
| 2.3.3 RACE方法克隆柠条GR、F3H基因全长序列 | 第30-32页 |
| 2.4 柠条GR、F3H基因生物信息学分析 | 第32-33页 |
| 2.5 柠条GR、F3H基因转录水平表达分析 | 第33页 |
| 2.5.1 组织特异性表达分析 | 第33页 |
| 2.5.2 逆境胁迫下的表达分析 | 第33页 |
| 2.5.3 数据分析 | 第33页 |
| 2.6 柠条GR、F3H基因启动子的分离 | 第33-37页 |
| 2.6.1 柠条基因组总DNA提取 | 第33页 |
| 2.6.2 染色体步移法克隆柠条GR、F3H基因启动子 | 第33-36页 |
| 2.6.3 柠条GR、F3H基因启动子序列分析 | 第36-37页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第37-63页 |
| 3.1 柠条GR基因的克隆、表达分析及其启动子的分离 | 第37-49页 |
| 3.1.1 柠条GR基因中间片段的克隆 | 第37-38页 |
| 3.1.2 RACE方法克隆柠条GR基因全长序列 | 第38页 |
| 3.1.3 柠条GR基因生物信息学分析 | 第38-45页 |
| 3.1.4 柠条GR基因转录水平的表达分析 | 第45-47页 |
| 3.1.5 柠条GR基因启动子的分离 | 第47-49页 |
| 3.2 柠条F3H基因的克隆、表达分析及其启动子的分离 | 第49-63页 |
| 3.2.1 柠条F3H基因中间片段的克隆 | 第49-50页 |
| 3.2.2 RACE方法克隆柠条F3H基因全长序列 | 第50-51页 |
| 3.2.3 柠条F3H基因生物信息学分析 | 第51-57页 |
| 3.2.4 柠条F3H基因转录水平的表达分析 | 第57-60页 |
| 3.2.5 柠条F3H基因启动子的分离 | 第60-63页 |
| 第四章 讨论 | 第63-66页 |
| 4.1 柠条GR基因的克隆、表达分析及其启动子的分离 | 第63-64页 |
| 4.2 柠条F3H基因的克隆、表达分析及其启动子的分离 | 第64-66页 |
| 第五章 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
