| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-7页 |
| 缩略词 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 真菌两型转换及相关机制研究进展 | 第11-14页 |
| 1.3 虫生真菌两型生长研究现状及对莱氏野村菌两型生长研究的意义 | 第14-16页 |
| 1.4 研究内容和技术路线 | 第16-18页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第16-17页 |
| 1.4.2 技术路线 | 第17-18页 |
| 1.5 本研究的创新性 | 第18-20页 |
| 2 莱氏野村菌酵母型细胞的制备方法的优化 | 第20-29页 |
| 2.1 材料和仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.1.1 菌株和分生孢子 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂和培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2.2 方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 优化接种分生孢子的储存时间 | 第21页 |
| 2.2.2 优化接种培养基琼脂浓度 | 第21页 |
| 2.2.3 优化接种方式 | 第21页 |
| 2.2.4 观察莱氏野村菌两型生长 | 第21-22页 |
| 2.3 结果 | 第22-26页 |
| 2.3.1 不同贮藏时间分生孢子对酵母型细胞形成的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.2 固体培养基硬度对酵母型细胞形成的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.3 不同接种方式对酵母型细胞形成的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.4 莱氏野村菌酵母型细胞生长观察 | 第25-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-29页 |
| 3 转录组研究莱氏野村菌两型转换机制 | 第29-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第29页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.2 主要仪器设备 | 第29页 |
| 3.2 方法 | 第29-35页 |
| 3.2.1 收集试验样品 | 第29页 |
| 3.2.2 抽提总RNA和反转录合成cDNA | 第29-30页 |
| 3.2.3 生物信息学分析Illumina测序的结果 | 第30-31页 |
| 3.2.4 RT-qPCR验证和分析 | 第31-35页 |
| 3.3 结果 | 第35-46页 |
| 3.3.1 Illumina测序结果及数据分析 | 第35-40页 |
| 3.3.2 拼接结果的注释 | 第40-43页 |
| 3.3.3 与两型转换相关的基因的筛选 | 第43-45页 |
| 3.3.4 转录组结果的定量PCR验证 | 第45-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-49页 |
| 4 环境PH值对莱氏野村菌形态转换影响的验证 | 第49-52页 |
| 4.1 实验材料 | 第49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49页 |
| 4.3 实验结果 | 第49-50页 |
| 4.4 讨论 | 第50-52页 |
| 5 主要结论和后续工作建议 | 第52-54页 |
| 5.1 主要结论 | 第52页 |
| 5.2 创新点 | 第52页 |
| 5.3 后续工作建议 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 附录 | 第63页 |
| 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第63页 |
