| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-15页 |
| 1.1 研究意义 | 第11-12页 |
| 1.2 国内外研究概况 | 第12-13页 |
| 1.3 论文研究内容及创新点 | 第13-15页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第13-14页 |
| 1.3.2 创新点 | 第14-15页 |
| 第二章 生物酶洗毛菌种的分离筛选与鉴定 | 第15-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第15-19页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1.1 羊毛 | 第15页 |
| 2.1.1.2 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 2.1.1.3 主要试剂 | 第16页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第16-19页 |
| 2.1.2.1 培养基 | 第16-17页 |
| 2.1.2.2 含脂率测定 | 第17页 |
| 2.1.2.3 菌种筛选流程 | 第17页 |
| 2.1.2.4 菌种初筛 | 第17页 |
| 2.1.2.5 菌种复筛 | 第17-18页 |
| 2.1.2.6 菌种的鉴定流程 | 第18页 |
| 2.1.2.7 16S rDNA PCR(Polymerase Chain Reaction)扩增 | 第18页 |
| 2.1.2.8 PCR产物电泳 | 第18-19页 |
| 2.1.2.9 PCR产物纯化 | 第19页 |
| 2.1.2.10 PCR产物的序列测定和分析 | 第19页 |
| 2.1.2.11 菌株菌落形态特征 | 第19页 |
| 2.1.2.12 菌株生理生化特征 | 第19页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第19-26页 |
| 2.2.1 脂肪酶菌种筛选 | 第19-20页 |
| 2.2.2 菌种分子生物学鉴定 | 第20-24页 |
| 2.2.2.1 菌种16S rDNA PCR | 第20-21页 |
| 2.2.2.2 16S rDNA PCR产物纯化 | 第21页 |
| 2.2.2.3 16S rDNA PCR产物的序列测定和分析 | 第21-24页 |
| 2.2.3 菌株菌落形态特征 | 第24-25页 |
| 2.2.4 菌株的形态特征 | 第25-26页 |
| 2.2.5 菌种生理生化鉴定 | 第26页 |
| 2.3 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 生物酶洗毛菌种生长条件优化 | 第27-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 菌种 | 第27页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第27页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第27-28页 |
| 3.2 试验方法 | 第28-30页 |
| 3.2.1 培养基 | 第28页 |
| 3.2.2 种子发酵液的制备 | 第28页 |
| 3.2.3 培养基的单因素实验 | 第28-29页 |
| 3.2.3.1 碳源 | 第29页 |
| 3.2.3.2 氮源 | 第29页 |
| 3.2.3.3 无机盐 | 第29页 |
| 3.2.3.4 初始pH | 第29页 |
| 3.2.3.5 碳氮比 | 第29页 |
| 3.2.4 Bacteroidetes与Sphingobacterium sp.的培养基优化正交试验 | 第29-30页 |
| 3.2.5 菌体生长条件优化 | 第30页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第30-41页 |
| 3.3.1 Bacteroidetes培养基的单因素实验结果与分析 | 第30-35页 |
| 3.3.1.1 碳源实验结果分析 | 第30-31页 |
| 3.3.1.2 氮源实验结果分析 | 第31-32页 |
| 3.3.1.3 无机盐实验结果分析 | 第32页 |
| 3.3.1.4 初始pH单因素实验结果 | 第32-33页 |
| 3.3.1.5 碳氮比实验结果分析 | 第33-34页 |
| 3.3.1.6 Bacteroidetes培养基优化正交试验结果与分析 | 第34-35页 |
| 3.3.2 Shingobacterium sp.培养基的单因素实验结果与分析 | 第35-40页 |
| 3.3.2.1 碳源单因素实验 | 第35-36页 |
| 3.3.2.2 氮源单因素实验 | 第36-37页 |
| 3.3.2.3 无机盐单因素实验 | 第37页 |
| 3.3.2.4 初始pH单因素实验 | 第37-38页 |
| 3.3.2.5 碳氮比单因素实验 | 第38-39页 |
| 3.3.2.6 Sphingobacterium sp.培养基优化正交试验结果与分析 | 第39-40页 |
| 3.3.3 最适温度测定 | 第40-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 生物酶洗毛菌种发酵条件优化 | 第42-54页 |
| 4.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 4.1.1 菌种 | 第42页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第43-44页 |
| 4.2 脂肪酶活力测定(酸碱滴定法) | 第44-45页 |
| 4.2.1 原理 | 第44页 |
| 4.2.2 脂肪酶活测定 | 第44-45页 |
| 4.3 发酵条件优化 | 第45-53页 |
| 4.3.1 培养基配制 | 第45-46页 |
| 4.3.2 接种和发酵 | 第46页 |
| 4.3.3 碳源对产酶的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.4 氮源对产酶的影响 | 第47-49页 |
| 4.3.5 初始pH对产酶的影响 | 第49页 |
| 4.3.6 发酵温度对产酶的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.7 发酵时间对产酶的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.8 接种量对产酶的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.9 摇瓶装量对产酶的影响 | 第52-53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 洗毛工艺条件优化 | 第54-64页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第54-58页 |
| 5.1.1 材料 | 第54页 |
| 5.1.2 菌种 | 第54页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第54-55页 |
| 5.1.4 实验试剂 | 第55页 |
| 5.1.5 酶液制备 | 第55页 |
| 5.1.6 实验方案 | 第55-57页 |
| 5.1.6.1 寻求最佳酶液互配方式 | 第56页 |
| 5.1.6.2 寻求最佳酶液互配比例和最佳酶用量 | 第56页 |
| 5.1.6.3 单因素实验 | 第56页 |
| 5.1.6.4 正交实验 | 第56-57页 |
| 5.1.7 纤维检测分析 | 第57-58页 |
| 5.1.7.1 含脂率测定 | 第57页 |
| 5.1.7.2 白度测试 | 第57页 |
| 5.1.7.3 纤维拉伸性能测试 | 第57-58页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第58-63页 |
| 5.2.1 酶液复配方式 | 第58页 |
| 5.2.2 酶液复配比例及酶用量 | 第58-59页 |
| 5.2.3 单因素实验 | 第59-62页 |
| 5.2.3.1 最佳洗毛温度 | 第59-60页 |
| 5.2.3.2 最佳洗毛pH值 | 第60-61页 |
| 5.2.3.3 最佳洗毛浴比 | 第61页 |
| 5.2.3.4 最佳洗毛时间 | 第61-62页 |
| 5.2.4 正交试验 | 第62-63页 |
| 5.2.5 生物酶法洗毛对羊毛纤维主要指标的影响 | 第63页 |
| 5.3 本章小结 | 第63-64页 |
| 第六章 太阳能热水系统能源消耗与收益分析 | 第64-67页 |
| 第七章 结论与展望 | 第67-70页 |
| 7.1 结论 | 第67-68页 |
| 7.2 展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
