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牛病毒性腹泻病毒(BVDV)纳米抗体生物学特性研究及ELISA检测方法的建立

中文摘要第6-7页
Abstract第7-8页
英语缩略词表第14-15页
引言第15-16页
第一章 文献综述第16-29页
    综述一 牛病毒性腹泻/粘膜病的研究进展第16-23页
        1 牛病毒性腹泻/粘膜病的概况第16页
        2 BVDV基因组特性第16-20页
            2.1 结构蛋白第17-18页
                2.1.1 核心蛋白C第17-18页
                2.1.2 囊膜蛋白E~(rns)第18页
                2.1.3 囊膜蛋白E1第18页
                2.1.4 囊膜蛋白E2第18页
            2.2 非结构蛋白第18-20页
                2.2.1 非结构蛋白N~(pro)第18-19页
                2.2.2 非结构蛋白P7第19页
                2.2.3 非结构蛋白NS2第19页
                2.2.4 非结构蛋白NS3第19页
                2.2.5 非结构蛋白NS4A和NS4B第19页
                2.2.6 非结构蛋白NS5A和NS5B第19-20页
        3 BVDV的检测第20-22页
            3.1 检测抗原第20-21页
                3.1.1 病毒分离(VI)第20页
                3.1.2 抗原捕获ELISA(ACE-ELISA)第20页
                3.1.3 免疫组化(IHC)第20-21页
                3.1.4 核酸检测第21页
            3.2 检测抗体第21-22页
                3.2.1 病毒中和实验(VN)第21页
                3.2.2 酶联免疫吸附试验(ELISA)第21-22页
        4 小结与展望第22-23页
    综述二 纳米抗体的研究进展及应用第23-29页
        1 纳米抗体的概述第23页
        2 纳米抗体的特性第23-26页
            2.1 纳米抗体结构特性第23-25页
            2.2 纳米抗体功能特性第25-26页
                2.2.1 高水溶性和稳定性第25页
                2.2.2 抗原识别能力强第25-26页
                2.2.3 免疫原性低第26页
                2.2.4 穿透性强第26页
        3 纳米抗体的应用第26-29页
            3.1 纳米抗体用于分子成像第26-27页
            3.2 纳米抗体诊断第27页
            3.3 纳米抗体靶向治疗第27-28页
            3.4 纳米抗体用于农业保护和食品分析第28-29页
第二章 实验研究第29-75页
    实验一 BVDV重组E0蛋白原核表达及间接ELISA检测方法的建立第29-39页
        1 材料与方法第30-32页
            1.1 材料第30页
            1.2 方法第30-32页
                1.2.1 BVDV-E0表达载体的构建第30页
                1.2.2 间接ELISA操作步骤第30-31页
                1.2.3 间接ELISA条件的优化第31页
                1.2.4 临界值的确定第31-32页
                1.2.5 特异性实验第32页
                1.2.6 敏感性实验第32页
                1.2.7 与商品化试剂盒的比较第32页
        2 结果第32-37页
            2.1 BVDV-E0蛋白表达载体的构建及表达第32-33页
            2.2 最佳反应条件的选择第33-36页
                2.2.1 抗原包被浓度和血清稀释比第33-34页
                2.2.2 最佳封闭液和封闭时间的确定第34页
                2.2.3 血清最佳孵育时间第34-35页
                2.2.4 酶标二抗稀释倍数及作用时间的确定第35页
                2.2.5 底物作用最佳时间第35-36页
            2.3 临界值的确定第36页
            2.4 特异性实验第36页
            2.5 敏感性实验第36-37页
            2.6 与商品化试剂盒的比较第37页
        3 讨论第37-39页
    实验二 牛病毒性腹泻病毒(BVDV)E0蛋白纳米抗体文库的扩增及筛选第39-48页
        1 材料与方法第40-44页
            1.1 材料第40页
                1.1.1 菌株、抗体第40页
                1.1.2 试剂第40页
                1.1.3 主要仪器设备第40页
            1.2 方法第40-44页
                1.2.1 扩增与收集辅助噬菌体M13K07第40页
                1.2.2 辅助噬菌体M13K07的滴度测定第40-41页
                1.2.3 BVDV纳米抗体噬菌体展示文库的扩增第41页
                1.2.4 BVDV纳米抗体噬菌体展示文库滴度的测定第41-42页
                1.2.5 筛选抗BVDV-E0的纳米抗体第42-43页
                1.2.6 噬菌体VHH单克隆的制备第43页
                1.2.7 Phage ELISA验证第43-44页
                1.2.8 间接ELISA测定抗BVDV-E0纳米抗体的特异性第44页
                1.2.9 ELISA阳性纳米抗体噬菌体单克隆的序列测定第44页
        2 结果第44-47页
            2.1 辅助性噬菌体M13KO7滴度的测定第44页
            2.2 文库滴度的测定第44-45页
            2.3 BVDV特异性VHH纳米抗体的筛选第45页
            2.4 PHAGE ELISA初步验证第45-46页
            2.5 间接ELISA测定BVDV-E0纳米抗体的特异性第46-47页
            2.6 ELISA阳性纳米抗体噬菌体单克隆的序列测定第47页
        3 讨论第47-48页
    实验三 纳米抗体NB1和NB2原核表达载体的构建及大肠杆菌中诱导表达第48-62页
        1 材料与方法第48-54页
            1.1 材料第48-49页
                1.1.1 试剂第48-49页
                1.1.2 主要仪器第49页
            1.2 方法第49-54页
                1.2.1 Nb1和Nb2引物设计第49页
                1.2.2 目的基因扩增第49-50页
                1.2.3 目的片段PCR产物检测及胶回收第50页
                1.2.4 目的片段连接T载体第50页
                1.2.5 转化重组表达载体至DH5α感受态细胞第50页
                1.2.6 目的片段连接T载体重组质粒的鉴定第50-51页
                1.2.7 pET-30a(+)-Nb1/Nb2原核表达载体的构建及鉴定第51-52页
                1.2.8 pET-30a-Nb1/Nb2原核表达及蛋白的纯化第52-54页
                1.2.9 WB检测Nb1和Nb2蛋白第54页
        2 结果第54-61页
            2.1 纳米抗体NB1和NB2目的基因的扩增第54-55页
            2.2 重组表达载体PET-30A-NB1/NB2的构建第55-56页
            2.3 SDS-PAGE结果第56-57页
            2.4 NB1和NB2的纯化第57-59页
                2.4.1 上清中亲和层析纯化Nb1蛋白第57-58页
                2.4.2 上清中亲和层析纯化Nb2蛋白第58-59页
            2.5 WB检测NB1和NB2蛋白第59-61页
        3 讨论第61-62页
    实验四 BVDV-E0纳米抗体NB1和NB2生物特性的研究第62-70页
        1 材料和方法第62-65页
            1.1 材料第62-63页
                1.1.1 实验材料第62-63页
                1.1.2 实验仪器第63页
            1.2 方法第63-65页
                1.2.1 纳米抗体结合力的验证第63-64页
                1.2.2 纳米抗体亲和力的鉴定第64页
                1.2.3 纳米抗体活性的分析第64页
                1.2.4 细胞水平验证纳米抗体毒性第64-65页
        2 结果第65-68页
            2.1 WB实验结果第65-66页
            2.2 纳米抗体亲和力第66-67页
            2.3 纳米抗体活性分析第67页
            2.4 细胞水平验证NB1和NB2的细胞毒性第67-68页
        3 讨论第68-70页
    实验五 基于纳米抗体NB1 ELISA检测方法的建立第70-75页
        1 材料与方法第70-72页
            1.1 材料第70-71页
            1.2 方法第71-72页
                1.2.1 重组蛋白E0制备第71页
                1.2.2 BVDV-NADL的扩增第71页
                1.2.3 兔多克隆抗体和羊驼多克隆抗体的制备第71页
                1.2.4 血清抗体效价的检测第71页
                1.2.5 双抗夹心ELISA第71-72页
                1.2.6 间接阻断ELISA第72页
        2 结果第72-74页
            2.1 多克隆抗体血清效价的检测第72-73页
            2.2 双抗夹心ELISA第73页
            2.3 间接阻断ELISA第73-74页
        3 讨论第74-75页
第三章 实验结论第75-76页
创新点第76-77页
参考文献第77-84页
致谢第84-85页
作者简介第85-86页
附件第86页

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