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芒草细胞壁降解中的多糖变化和NcPMO-2在植物中功能探索

摘要第7-9页
Abstract第9-11页
缩略语表第12-13页
第一章 芒草细胞壁降解过程的多糖变化第13-46页
    1 前言第13-25页
        1.1 能源植物芒草的概况及应用第13-14页
        1.2 植物细胞壁的基本组成第14-19页
            1.2.1 纤维素第15-16页
            1.2.2 半纤维素第16-17页
            1.2.3 果胶第17-18页
            1.2.4 木质素第18页
            1.2.5 细胞壁各成分间的联系及相互作用第18-19页
        1.3 生物质预处理及酶解第19-21页
            1.3.1 碱预处理第20页
            1.3.2 酸预处理第20-21页
            1.3.3 生物质酶解第21页
        1.4 细胞壁成分免疫学研究法第21-24页
            1.4.1 糖组分析第22-23页
            1.4.2 免疫荧光检测第23-24页
        1.5 芒草茎秆的组织结构第24-25页
        1.6 本研究目的与意义第25页
    2 实验材料与方法第25-31页
        2.1 实验材料第25-26页
        2.2 实验主要仪器第26页
        2.3 实验方法第26-31页
            2.3.1 石蜡切片制法第26-27页
            2.3.2 免疫标记及显微镜观察第27-28页
            2.3.3 比色法测定己糖、戊糖及糖醛酸第28-29页
            2.3.4 半纤维素单糖含量测定第29-31页
    3 结果与分析第31-44页
        3.1 碱预处理酶解免疫荧光检测第31-34页
        3.2 酸预处理酶解免疫荧光检测第34-36页
        3.3 直接酶解免疫荧光检测第36-39页
        3.4 酸碱预处理及直接酶解的戊糖、己糖、糖醛酸释放量第39-41页
        3.5 酸碱预处理酶解及直接酶解的单糖释放量第41-44页
    4 讨论第44-46页
        4.1 细胞壁多糖表位与免疫荧光检测第44页
        4.2 戊糖、己糖、糖醛酸测定与免疫荧光检测第44-45页
        4.3 展望第45-46页
第二章 Nc PMO-2在植物中功能探索第46-73页
    1 前言第46-53页
        1.1 PMO的发现第47页
        1.2 PMO的氧化酶切机制第47-48页
        1.3 PMO蛋白的多样性第48-50页
        1.4 PMO的多样性及生物学功能第50-51页
        1.5 PMO底物多样性第51-52页
        1.6 本研究的目的与意义第52-53页
    2 材料与方法第53-65页
        2.1 实验材料第53页
        2.2 Nc PMO-2序列的获取第53-54页
        2.3 拟南芥和水稻超表达载体构建第54-58页
            2.3.1 含目的片段的pUC57及pD1301s与pUBI-ZH2空载体双酶切第54页
            2.3.2 酶切产物回收第54-55页
            2.3.3 目的片段连接载体pD1301s与p UBI-ZH2第55-56页
            2.3.4 菌落PCR检测阳性克隆第56页
            2.3.5 大肠杆菌感受态DH5α细胞的制备第56-57页
            2.3.6 连接产物转化DH5α感受态(热激法)第57页
            2.3.7 大肠杆菌质粒提取第57-58页
            2.3.8 质粒双酶切检测第58页
            2.3.9 阳性质粒转化农杆菌菌株GV3101和EHA105第58页
        2.4 拟南芥转基因及阳性苗筛选第58-59页
        2.5 水稻组织培养第59-61页
            2.5.1 愈伤诱导第59页
            2.5.2 愈伤继代第59-60页
            2.5.3 预培养第60页
            2.5.4 愈伤与农杆菌共培养第60页
            2.5.5 选择培养第60页
            2.5.6 分化培养第60页
            2.5.7 生根培养第60-61页
            2.5.8 移栽第61页
        2.6 水稻及拟南芥种植第61页
        2.7 拟南芥及水稻叶片DNA提取第61-62页
        2.8 拟南芥及水稻叶片总RNA提取第62-63页
        2.9 反转录第63页
        2.10 植物细胞壁成分测定第63-64页
        2.11 乙酸-硝酸-水法测定晶体纤维素第64-65页
        2.12 水稻成熟期性状测定第65页
        2.13 酶解效率测定第65页
    3 结果与分析第65-71页
        3.1 Nc PMO-2基因合成第65-67页
        3.2 Nc PMO-2在拟南芥和水稻中的超表达载体构建第67页
        3.3 拟南芥、水稻超表达转基因植株表达量测定第67-68页
        3.4 拟南芥、水稻超表达转基因植株表型鉴定第68-69页
        3.5 拟南芥、水稻超表达转基因植株细胞壁成分分析第69-70页
        3.6 拟南芥、水稻超表达转基因植株酶解产糖第70-71页
    4 讨论第71-73页
        4.1 PMO在高等植物细胞壁降解中可能发挥的作用第71页
        4.2 PMO与分蘖、结实率等表型的关系第71-72页
        4.3 植物细胞壁结构改良与生物能源利用第72-73页
参考文献第73-83页
附录第83-87页
    附录A:标准曲线第83-84页
    附录B:合成基因及引物序列第84-86页
    附录C:个人简历第86-87页
致谢第87-88页

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