| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 符号说明 | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 糖尿病定义 | 第11页 |
| 1.3 I型糖尿病致病机理及研究模型的制作 | 第11-12页 |
| 1.4 氧化应激与I型糖尿病之间的关系 | 第12-14页 |
| 1.5 细胞凋亡及其信号通路 | 第14页 |
| 1.6 过氧化物还原酶（peroxiredoxins）家族 | 第14-15页 |
| 1.7 Prx I与I型糖尿病之间的关系 | 第15页 |
| 1.8 研究的意义 | 第15-17页 |
| 第二章 实验材料及方法 | 第17-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 模式动物和细胞系 | 第17页 |
| 2.1.2 主要实验用试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 小鼠基因型鉴定（Genotyping） | 第19-20页 |
| 2.2.2 小鼠血糖检测 | 第20页 |
| 2.2.3 小鼠组织的HE染色 | 第20-21页 |
| 2.2.3.1 试验样品获得 | 第20页 |
| 2.2.3.2 HE染色 | 第20-21页 |
| 2.2.4 Min6细胞系Prx I基因敲降 | 第21页 |
| 2.2.4.1 Min6细胞培养 | 第21页 |
| 2.2.4.2 Min6细胞使用含有Prx I shRNA序列的慢病毒的转染过程 | 第21页 |
| 2.2.4.3 Min6细胞使用含有Prx I shRNA序列的慢病毒的筛选过程 | 第21页 |
| 2.2.5 细胞增殖速度检测 | 第21页 |
| 2.2.6 MTT法检测细胞的死亡率 | 第21页 |
| 2.2.7 流式细胞仪检测细胞周期 | 第21-22页 |
| 2.2.7.1 细胞培养与STZ处理处理 | 第21-22页 |
| 2.2.7.2 细胞荧光染色 | 第22页 |
| 2.2.8 流式细胞仪检测凋亡情况 | 第22页 |
| 2.2.8.1 细胞培养与STZ处理处理 | 第22页 |
| 2.2.8.2 Min6细胞荧光染色 | 第22页 |
| 2.2.9 蛋白质免疫印迹（Western blotting）检测相关信号蛋白的表达情况 | 第22-24页 |
| 2.2.9.1 组织蛋白样品收集 | 第22页 |
| 2.2.9.2 利用Bradford方法检测提取的总蛋白质浓度 | 第22-24页 |
| 第三章 实验结果 | 第24-33页 |
| 3.1 小鼠基因型的鉴定 | 第24-25页 |
| 3.2 比较分析Prx I基因敲除模式小鼠与野生型小鼠腹腔注射STZ的致死率 | 第25页 |
| 3.3 处理STZ后，两种小鼠血糖、体重和活性氧的差异 | 第25-26页 |
| 3.4 STZ诱导两种小鼠死亡中组织病理分析 | 第26-27页 |
| 3.5 Min6细胞系Prx I基因敲降及鉴定 | 第27-28页 |
| 3.6 Min6细胞系shPrx I与Scramble的生长速率的比较 | 第28-29页 |
| 3.7 Prx I可以阻止由STZ引起的Min6细胞增殖抑制现象 | 第29页 |
| 3.8 Prx I抑制由不同浓度的STZ引发的Min6细胞的凋亡 | 第29-31页 |
| 3.9 Prx I抑制由不同时间的STZ引发的Min6细胞的凋亡 | 第31页 |
| 3.10 Prx I对STZ引发的信号调控 | 第31-33页 |
| 第四章 讨论 | 第33-36页 |
| 第五章 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 附录 | 第42-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 个人简历 | 第47页 |
