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褪黑素对猪腔前卵泡体外发育的影响及机制研究

摘要第5-7页
Abstract第7-9页
缩略词表第16-19页
第一篇 文献综述第19-38页
    第一章 腔前卵泡体外培养研究进展第19-31页
        1 腔前卵泡体外培养研究概况第19-20页
        2 腔前卵泡的分离方法第20-22页
            2.1 机械法第20-21页
            2.2 酶解法第21-22页
            2.3 机械-酶解法第22页
        3 腔前卵泡培养方法第22-24页
            3.1 普通培养法第22-23页
            3.2 2D培养法第23页
            3.3 3D培养法第23-24页
        4 腔前卵泡体外培养的影响因素第24-30页
            4.1 不同阶段腔前卵泡对体外发育的影响第24-25页
            4.2 培养条件对腔前卵泡体外培养的影响第25-26页
                4.2.1 共培养对腔前卵泡体外发育的影响第25-26页
                4.2.2 氧分压对腔前卵泡体外发育的影响第26页
                4.2.3 其他条件因素对腔前卵泡体外发育的影响第26页
            4.3 培养基对腔前卵泡体外发育的影响第26-30页
                4.3.1 基础培养基对体外培养腔前卵泡的影响第26-27页
                4.3.2 促性腺激素对体外培养腔前卵泡的影响第27-28页
                4.3.3 细胞因子的影响第28-30页
        5 结语第30-31页
    第二章 褪黑素对雌性生殖影响研究进展第31-38页
        1 褪黑素的合成与代谢第31-32页
        2 褪黑素受体与信号转导第32-33页
        3 褪黑素与卵母细胞成熟及胚胎发育第33-36页
        4 褪黑素与卵泡发育第36-38页
第二篇 研究论文第38-121页
    第三章 猪腔前卵泡来源孤雌激活囊胚的获得第38-56页
        1 引言第38-40页
        2 材料与方法第40-45页
            2.1 试验材料第40页
            2.2 试验试剂第40-41页
            2.3 主要仪器第41-42页
            2.4 试验耗材第42页
            2.5 溶液配制第42-45页
        3 试验方法第45-50页
            3.1 技术路线第45页
            3.2 腔前卵泡与小囊腔卵泡的分离第45-46页
            3.3 卵泡与卵母细胞直径的测定及成腔卵泡的统计第46页
            3.4 腔前卵泡来源卵母细胞-颗粒细胞复合物(PFs-OGCs)的分离第46-47页
            3.5 小囊腔卵泡来源卵母细胞-颗粒细胞复合物(EAFs-OGCs)的分离第47-48页
            3.6 猪大囊腔卵泡来源卵丘细胞-卵母细胞复合物(COCs)的采集第48页
            3.7 PFs-OGCs与EAFs-OGCs的体外培养第48-49页
            3.8 体外培养OGCs回收率的统计第49页
            3.9 猪卵母细胞的体外成熟培养第49页
            3.10 猪卵母细胞孤雌激活与胚胎培养第49-50页
            3.11 统计与分析第50页
        4 结果与分析第50-54页
            4.1 猪卵巢的选择第50-51页
            4.2 卵泡直径与卵母细胞直径及卵泡腔形成的关系第51-52页
            4.3 卵泡来源OGCs的体外培养结果第52-54页
        5 讨论第54-55页
        6 小结第55-56页
    第四章 褪黑素对体外培养猪PFs-OGCs的影响第56-70页
        1 引言第56-57页
        2 材料与方法第57-60页
            2.1 试验材料第57页
            2.2 试验试剂第57-58页
            2.3 主要仪器与耗材第58页
            2.4 相关试剂的配制第58-60页
        3 试验方法第60-63页
            3.1 技术路线第60页
            3.2 腔前卵泡的分离第60页
            3.3 PFs-OGCs的分离第60-61页
            3.4 PFs-OGCs的体外培养第61页
            3.5 猪卵母细胞的体外成熟培养第61页
            3.6 猪卵母细胞的孤雌激活与胚胎培养第61页
            3.7 PFs-OGCs总RNA的提取第61-62页
            3.8 PFs-OGCs总RNA逆转录至cDNA第62页
            3.9 荧光定量PCR(q-PCR)第62-63页
            3.10 q-PCR猪引物列表第63页
            3.11 统计与分析第63页
        4 结果与分析第63-67页
            4.1 不同浓度褪黑素处理对猪PFs-OGCs的影响第63-64页
            4.2 褪黑素与受体抑制剂共同作用对PFs-OGCs的影响第64-67页
        5 讨论第67-69页
            5.1 不同浓度褪黑素对猪PFs-OGCs的影响第67-68页
            5.2 褪黑素与受体抑制剂共处理对PFs-OGCs的影响第68-69页
        6 小结第69-70页
    第五章 褪黑素对体外培养猪鞘膜细胞的影响第70-95页
        1 引言第70-71页
        2 材料与方法第71-74页
            2.1 试验材料第71页
            2.2 主要试剂第71-72页
            2.3 主要仪器与耗材第72页
            2.4 相关试剂的配制第72-74页
        3 试验方法第74-84页
            3.1 技术路线第74页
            3.2 猪鞘膜细胞的分离与纯化第74-75页
            3.3 不连续密度梯度离心的操作第75-76页
            3.4 细胞免疫荧光染色第76-77页
            3.5 流式细胞术检测细胞抗原表位第77页
            3.6 免疫组织化学染色第77-78页
            3.7 增殖活力检测第78页
            3.8 MTT法检测细胞活力第78-79页
            3.9 流式细胞仪检测鞘膜细胞增殖指数第79页
            3.10 类固醇激素测定第79-80页
            3.11 细胞内活性氧测定第80-81页
            3.12 PFs-OGCs总RNA的提取第81-82页
            3.13 PFs-OGCs总RNA逆转录至cDNA第82页
            3.14 荧光定量PCR(q-PCR)第82-83页
            3.15 统计分析第83-84页
        4 结果与分析第84-92页
            4.1 猪鞘膜细胞原代培养与纯化结果第84页
            4.2 猪鞘膜细胞结果第84-85页
            4.3 猪鞘膜细胞褪黑素受体检测结果第85-87页
            4.4 不同浓度褪黑素对猪鞘膜细胞活力与增殖的影响结果第87-89页
            4.5 褪黑素对鞘膜细胞激素分泌的影响结果第89-91页
            4.6 褪黑素对猪鞘膜细胞ROS与可过氧化物酶的影响结果第91页
            4.7 褪黑素与Luzindole共同作用对鞘膜细胞的影响结果第91-92页
        5 讨论第92-94页
        6 小结第94-95页
    第六章 褪黑素影响体外培养猪PFs-OGCs的分子机制第95-121页
        1 引言第95页
        2 材料与方法第95-96页
            2.1 试验材料第95页
            2.2 主要试剂第95-96页
            2.3 主要仪器第96页
        3 试验方法第96-104页
            3.1 建库流程第96-97页
            3.2 信息分析流程第97页
            3.3 总RNA提取第97页
            3.4 总RNA质量检测第97-98页
            3.5 mRNA测序文库构建及高通量测序第98页
            3.6 测序结果的初步处理第98-99页
                3.6.1 原始序列数据第98页
                3.6.2 去除杂质数据第98-99页
                3.6.3 Clean reads数据第99页
                3.6.4 与参考序列比对第99页
            3.7 测序质量评估第99-100页
                3.7.1 测序长度分布评估第99页
                3.7.2 测序饱和度分析第99页
                3.7.3 基因表达量统计第99-100页
                3.7.4 基因覆盖度分析第100页
            3.8 差异表达基因筛选第100-101页
                3.8.1 基因表达量计算第100页
                3.8.2 差异表达基因筛选第100-101页
            3.9 基因表达模式聚类分析第101页
            3.10 Gene Ontology功能显著性富集分析第101-102页
            3.11 Pathway显著性富集分析第102-104页
        4 结果分析与讨论第104-120页
            4.1 总RNA质量分析结果第104-105页
            4.2 测序数据结果评估第105-108页
                4.2.1 数据比对统计第105-107页
                4.2.2 测序长度分布第107页
                4.2.3 测序饱和度分析第107-108页
            4.3 基因表达定量统计第108-115页
                4.3.1 基因覆盖度统计第108-109页
                4.3.2 差异表达基因分析第109-115页
            4.4 基因表达模式聚类分析第115页
            4.5 Gene Ontology功能显著性富集分析第115-118页
            4.6 KEGG Pathway显著性富集分析第118-119页
            4.7 差异表达基因q-PCR验证第119-120页
        5 小结第120-121页
全文总结第121-122页
参考文献第122-138页
致谢第138-140页
个人简历第140-143页

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