| 提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-13页 |
| 第2章 文献综述 | 第13-35页 |
| 2.1 新生儿脑的缺血缺氧 | 第13-19页 |
| 2.1.1 未成熟脑的能量代谢和营养物质运输 | 第14-15页 |
| 2.1.2 谷氨酸兴奋性毒性反应和 NMDA 受体过度活化 | 第15-19页 |
| 2.2 NA‐1 在多个动物试验及二期临床试验中通过神经保护作用治疗中风 | 第19-35页 |
| 2.2.1 NA‐1(PSD‐95 抑制剂)治疗脑中风的机制 | 第19-21页 |
| 2.2.2 NA‐1（PSD‐95 抑制剂）的结构特性 | 第21-22页 |
| 2.2.3 NA‐1（PSD‐95）在啮齿类动物模型中治疗中风的研究 | 第22-25页 |
| 2.2.4 NA‐1（PSD‐95）在非人类的灵长类动物模型中治疗中风的研究 | 第25-32页 |
| 2.2.5 NA‐1（PSD‐95）在人类临床实验中治疗中风的研究 | 第32-35页 |
| 第3章 实验材料和方法 | 第35-55页 |
| 3.0 实验材料 | 第35-37页 |
| 3.0.1 主要试剂 | 第35-36页 |
| 3.0.2 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.1 实验动物 | 第37-38页 |
| 3.2 药品管理及实验方案 | 第38-39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-55页 |
| 3.3.1 建立缺氧缺血性脑损伤模型（Hypoxic ischemic brain injury model，HI） | 第39-41页 |
| 3.3.2 TTC 染色‐测量梗死体积： | 第41-42页 |
| 3.3.3 为 TUNNEL 染色准备样本 | 第42页 |
| 3.3.4 NISSL 染色准备样本 | 第42页 |
| 3.3.5 为 western blot 准备样本 | 第42页 |
| 3.3.6 TUNNEL 染色 | 第42-44页 |
| 3.3.7 Nissl 染色 | 第44-46页 |
| 3.3.8 Western Blot（蛋白质印迹法） | 第46-50页 |
| 3.3.9 行为学功能恢复评估 | 第50-51页 |
| 3.3.10 NA‐1 在 OGD 试验中对神经细胞的保护作用 | 第51-55页 |
| 3.3.10.1 主要试剂配制 | 第51-52页 |
| 3.3.10.2 实验方法 | 第52-55页 |
| 第4章 实验结果 | 第55-69页 |
| 4.1 NA‐1 减少新生鼠缺血缺氧脑损伤的梗塞体积 | 第55-56页 |
| 4.2 NA‐1 改善了缺血缺氧后幼鼠的一般状态和神经行为 | 第56-61页 |
| 4.2.1 实验 1 中体重的变化 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验 2 中体重的变化 | 第57-58页 |
| 4.2.3 在实验 1 中 NA‐1 可以改善缺血缺氧损伤后神经行为的康复 | 第58-60页 |
| 4.2.4 在实验 2 中 NA‐1 可以改善缺血缺氧损伤后神经行为的康复 | 第60-61页 |
| 4.3 NA‐1 保护大脑免受缺血缺氧损伤所导致的形态学变化 | 第61-63页 |
| 4.4 NA‐1 激活促生存信号通路活性而抑制促凋亡信号通路 | 第63-67页 |
| 4.4.1 NA‐1 减少缺血缺氧损伤大脑中 TUNEL 阳性细胞 | 第63-65页 |
| 4.4.2 NA‐1 抑制 HI 诱导的 caspase‐3 裂解 | 第65-66页 |
| 4.4.3 NA‐1 恢复 p‐Akt 表达在缺血缺氧脑损伤模型中 | 第66-67页 |
| 4.5 NA‐1 在 OGD 试验中对神经细胞的保护作用 | 第67-69页 |
| 4.5.1 原代培养细胞中以神经元细胞为主 | 第67页 |
| 4.5.3 NA‐1 在 OGD 诱导的体外细胞损伤的保护作用 | 第67-69页 |
| 第5章 讨论 | 第69-75页 |
| 第6章 结论 | 第75页 |
| 创新点 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-91页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
