| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 实验研究 | 第13-48页 |
| 1.1 材料及方法 | 第13-26页 |
| 1.1.1 大鼠肝星状细胞的来源 | 第13页 |
| 1.1.2 主要实验仪器和试剂 | 第13-15页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第15-18页 |
| 1.1.4 大鼠肝星状细胞的培养 | 第18-19页 |
| 1.1.5 MTT法筛选TM的浓度、作用时间及ALLN的浓度 | 第19页 |
| 1.1.6 实验分组及处理 | 第19-20页 |
| 1.1.7 倒置显微镜观察细胞形态 | 第20页 |
| 1.1.8 流式细胞术检测细胞周期 | 第20页 |
| 1.1.9 激光共聚焦检测细胞内的Ca2+浓度 | 第20-21页 |
| 1.1.10 AO/PI法观察HSC的凋亡程度 | 第21页 |
| 1.1.11 透射电镜观察HSC超微结构 | 第21-22页 |
| 1.1.12 免疫细胞化学染色法检测HSC内caspase-3、calpain-2 的表达 | 第22页 |
| 1.1.13 Western Blot检测 α-SMA、GRP78、caspase-9、Bax、Bcl-2 及Ⅰ型胶原表达 | 第22-25页 |
| 1.1.14 统计学处理 | 第25-26页 |
| 1.2 实验结果 | 第26-38页 |
| 1.2.1 试剂作用时间和剂量筛选 | 第26-27页 |
| 1.2.2 倒置显微镜观察HSC的形态变化 | 第27-28页 |
| 1.2.3 细胞的增殖检测 | 第28页 |
| 1.2.4 各实验组HSC周期的改变 | 第28-29页 |
| 1.2.5 细胞内Ca2+浓度的变化 | 第29-31页 |
| 1.2.6 AO/PI法观察各组HSC凋亡情况 | 第31-32页 |
| 1.2.7 HSC超微结构的改变 | 第32页 |
| 1.2.8 免疫组织细胞化学染色法检测caspase-3、calpain-2 的表达 | 第32-34页 |
| 1.2.9 Western Blot检测 α-SMA、GRP78、caspase-9、Bax、Bcl-2 及Ⅰ型胶原的表达 | 第34-38页 |
| 1.3 讨论 | 第38-43页 |
| 1.3.1 倒置显微镜下形态变化 | 第39页 |
| 1.3.2 细胞增殖及周期的改变 | 第39-40页 |
| 1.3.3 细胞内Ca2+浓度 | 第40页 |
| 1.3.4 细胞凋亡 | 第40-41页 |
| 1.3.5 ERS标志蛋白GRP78的表达 | 第41页 |
| 1.3.6 Calpain-2 的表达 | 第41页 |
| 1.3.7 凋亡蛋白caspase-3、caspase-9、Bax以及Bcl-2 的表达 | 第41-42页 |
| 1.3.8 肝纤维化指标Ⅰ型胶原蛋白的表达 | 第42-43页 |
| 1.4 结论 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 第2章 综述 肝纤维化与内质网应激的研究 | 第48-59页 |
| 2.1 肝脏疾病 | 第48页 |
| 2.2 肝纤维化发生机制 | 第48页 |
| 2.3 HSC与肝纤维化的关系 | 第48-49页 |
| 2.4 细胞凋亡通路 | 第49-50页 |
| 2.5 内质网应激反应机制 | 第50-52页 |
| 2.5.1 CHOP凋亡途径 | 第51页 |
| 2.5.2 JNK凋亡途径 | 第51页 |
| 2.5.3 Caspase凋亡途径 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 导师简介 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62-63页 |
| 学位论文数据集 | 第63页 |
