| 缩略词表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 引言 | 第13-16页 |
| 第一部分 重组抗 CD20 单抗的药效学研究 | 第16-41页 |
| 第一节 B 淋巴瘤细胞 Raji、Daudi 及阴性细胞 MX-1 中 CD20 阳性细胞量测定 | 第16-19页 |
| 第二节 国产重组抗CD20 单抗对B 淋巴瘤细胞的体外CDC 作用的研究 | 第19-26页 |
| 1、材料与方法 | 第19-21页 |
| ·药品与试剂 | 第19页 |
| ·受试细胞 | 第19页 |
| ·仪器 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-21页 |
| ·实验原理 | 第19-20页 |
| ·实验步骤 | 第20页 |
| ·数据处理 | 第20-21页 |
| 2、结果 | 第21-25页 |
| 3、小结 | 第25-26页 |
| 第三节 国产重组抗CD20 单抗对B 淋巴瘤细胞的体外ADCC 作用的研究 | 第26-31页 |
| 1、材料与方法 | 第26-28页 |
| ·药品与试剂 | 第26页 |
| ·受试细胞 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·实验原理 | 第26-27页 |
| ·实验步骤 | 第27-28页 |
| 2、结果 | 第28-30页 |
| 3、小结 | 第30-31页 |
| 第四节 ~(125)I-rh-anti-CD20ximab 制备、鉴定及生物活性的测定 | 第31-36页 |
| 1、材料与方法 | 第31-32页 |
| ·药品与试剂 | 第31页 |
| ·受试细胞 | 第31页 |
| ·仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-32页 |
| ·rh-anti-CD20ximab 的 ~(125)I 标记 | 第31页 |
| ·标记反应物的分离纯化 | 第31-32页 |
| ·~(125)I-rh-anti-CD20ximab 含量测定 | 第32页 |
| ·纯度鉴定 | 第32页 |
| ·标记后生物活性测定 | 第32页 |
| 2、结果 | 第32-36页 |
| 第五节 国产重组抗 CD20 单抗体外与 CD20 高表达人 B 细胞淋巴瘤细胞系 Raji细胞的高亲和力结合 | 第36-41页 |
| 1、材料与方法 | 第36-38页 |
| ·药品与试剂 | 第36页 |
| ·受试细胞 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·实验原理 | 第36-37页 |
| ·实验步骤 | 第37-38页 |
| 2、结果 | 第38-40页 |
| 3 小结 | 第40-41页 |
| 第二部分 国产重组抗 CD20 单抗在猕猴体内的药效学实验 | 第41-49页 |
| 1、材料与方法 | 第41-43页 |
| ·药品与试剂 | 第41页 |
| ·仪器 | 第41页 |
| ·实验动物和分组 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·实验原理 | 第42页 |
| ·实验步骤 | 第42-43页 |
| 2、结果 | 第43-48页 |
| 3、小结 | 第48-49页 |
| 第三部分 重组抗CD20单抗的临床前药代动力学研究 | 第49-73页 |
| 第一节 双抗夹心ELISA法检测猴血清中重组抗CD20单抗的方法学建立和确认 | 第49-56页 |
| 1、材料与方法 | 第49-50页 |
| ·药品与试剂 | 第49页 |
| ·仪器 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-50页 |
| ·实验原理 | 第49-50页 |
| ·试剂配置 | 第50页 |
| ·检测步骤 | 第50页 |
| 2、结果 | 第50-55页 |
| 3、小结 | 第55-56页 |
| 第二节 重组抗 CD20 单抗在猕猴体内的药代动力学研究 | 第56-73页 |
| 1、材料与方法 | 第56-57页 |
| ·药品与试剂 | 第56页 |
| ·仪器 | 第56页 |
| ·实验动物和分组 | 第56页 |
| ·血清标准曲线和质控样品的制备 | 第56-57页 |
| ·猕猴单次静脉滴注国产重组抗CD20 单抗的药代动力学研究 | 第57页 |
| ·猕猴连续静脉滴注国产重组抗 CD20 单抗的药代动力学研究 | 第57页 |
| 2、结果 | 第57-71页 |
| 3、小结 | 第71-73页 |
| 讨论 | 第73-78页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 综述 | 第81-88页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 发表文章 | 第88-91页 |
