| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 1 绪论 | 第7-16页 |
| 1.1 食源性致病菌 | 第7页 |
| 1.2 食源性致病菌检测技术概述 | 第7-9页 |
| 1.2.1 传统微生物检测方法 | 第7-8页 |
| 1.2.2 分子生物学方法 | 第8页 |
| 1.2.3 免疫学方法 | 第8-9页 |
| 1.3 生物分子马达概述 | 第9-12页 |
| 1.3.1 旋转分子马达F_0F_1-ATP酶的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.3.2 F_0F_1-ATPase分子马达在食源性致病菌检测中的应用 | 第11-12页 |
| 1.4 适配体概述 | 第12-13页 |
| 1.4.1 适配体在食源性致病菌检测中的应用 | 第13页 |
| 1.5 半导体量子点及其应用 | 第13-14页 |
| 1.5.1 量子点概述 | 第13-14页 |
| 1.5.2 量子点在食源性致病菌检测中的应用 | 第14页 |
| 1.6 本课题的立题意义和研究内容 | 第14-16页 |
| 2 实验材料与方法 | 第16-22页 |
| 2.1 主要试剂 | 第16页 |
| 2.2 主要仪器 | 第16页 |
| 2.3 基于适配体识别-F_0F_1-ATPase生物传感检测沙门氏菌的方法研究 | 第16-19页 |
| 2.3.1 检测原理 | 第16-17页 |
| 2.3.2 载色体的制备 | 第17页 |
| 2.3.3 载色体的分选 | 第17页 |
| 2.3.4 载色体的纯化 | 第17-18页 |
| 2.3.5 荧光探针F-DHPE标记载色体 | 第18页 |
| 2.3.6 分子马达适配体生物传感系统的构建 | 第18页 |
| 2.3.7 鼠伤寒沙门氏菌的培养 | 第18页 |
| 2.3.8 鼠伤寒沙门氏菌的检测 | 第18-19页 |
| 2.3.9 方法特异性评价 | 第19页 |
| 2.3.10 实际样品的检测 | 第19页 |
| 2.4 基于适配体识别-量子点标记-F_0F_1-ATPase生物传感器检测副溶血性弧菌的方法研究 | 第19-22页 |
| 2.4.1 检测原理 | 第19-20页 |
| 2.4.2 载色体的制备 | 第20页 |
| 2.4.3 量子点标记载色体及生物素标记ε亚基抗体 | 第20页 |
| 2.4.4 分子马达适配体生物传感器的构建 | 第20页 |
| 2.4.5 副溶血性弧菌的处理 | 第20页 |
| 2.4.6 副溶血性弧菌的检测 | 第20-21页 |
| 2.4.7 方法特异性评价 | 第21页 |
| 2.4.8 实际样品检测 | 第21-22页 |
| 3 结果与讨论 | 第22-38页 |
| 3.1 基于适配体识别-F_0F_1-ATPase生物传感检测对鼠伤寒沙门氏菌检测的方法 | 第22-32页 |
| 3.1.1 载色体的表征 | 第22-23页 |
| 3.1.2 载色体的分选结果 | 第23页 |
| 3.1.3 载色体的纯化结果 | 第23-24页 |
| 3.1.4 载色体中F_0F_1-ATPase的酶活测定 | 第24-25页 |
| 3.1.5 载色体酶活的优化 | 第25-26页 |
| 3.1.6 F-DHPE荧光染料标记载色体的表征 | 第26-27页 |
| 3.1.7 载色体与适配体连接的表征 | 第27-29页 |
| 3.1.8 载色体浓度的优化 | 第29页 |
| 3.1.9 线性范围及检测限的确定 | 第29-30页 |
| 3.1.10 特异性实验 | 第30-31页 |
| 3.1.11 实际样品的检测 | 第31-32页 |
| 3.2 基于适配体识别-量子点标记-F_0F_1-ATPase生物传感器检测副溶血性弧菌的方法研究 | 第32-38页 |
| 3.2.1 量子点的荧光强度与pH变化关系的研究 | 第32页 |
| 3.2.2 量子点与载色体孵育时间的优化 | 第32-33页 |
| 3.2.3 适配体与量子点标记的载色体连接的激光共聚焦表征 | 第33-34页 |
| 3.2.4 载色体浓度的优化 | 第34页 |
| 3.2.5 线性范围及检测限的测定 | 第34-36页 |
| 3.2.6 特异性实验 | 第36页 |
| 3.2.7 实际样品检测 | 第36-38页 |
| 主要结论与展望 | 第38-39页 |
| 主要结论 | 第38页 |
| 展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第49页 |
