摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
目录 | 第8-11页 |
专业词汇缩写表 | 第11-14页 |
第1章 前言 | 第14-23页 |
1.1 课题背景介绍 | 第14-21页 |
1.1.1 β-catenin简介 | 第14-15页 |
1.1.2 β-catenin与疾病 | 第15-18页 |
1.1.2.1 β-catenin与阿尔茨海默症 | 第15-16页 |
1.1.2.2 β-catenin与癌症 | 第16-17页 |
1.1.2.3 β-catenin与代谢综合症 | 第17-18页 |
1.1.3 β-catenin与发育 | 第18-21页 |
1.1.3.1 β-catenin与海马 | 第19-20页 |
1.1.3.2 β-catenin与下丘脑 | 第20-21页 |
1.2 本课题研究内容及意义 | 第21-23页 |
1.2.1 研究内容 | 第21页 |
1.2.2 研究意义 | 第21-23页 |
第2章 β-catenin对海马发育作用的研究 | 第23-58页 |
引言 | 第23-25页 |
2.1 实验材料与方法 | 第25-39页 |
2.1.1 主要仪器设备 | 第25-26页 |
2.1.2 主要实验试剂 | 第26-27页 |
2.1.3 实验动物 | 第27页 |
2.1.4 条件性基因敲除小鼠的繁育和基因型鉴定 | 第27-29页 |
2.1.5 Nissl染色 | 第29-30页 |
2.1.6 免疫荧光染色 | 第30-31页 |
2.1.7 定量PCR | 第31-33页 |
2.1.8 原位杂交 | 第33-39页 |
2.1.9 图像采集与处理 | 第39页 |
2.1.10 统计学分析 | 第39页 |
2.2 实验结果 | 第39-55页 |
2.2.1 繁殖β-catenin CKO鼠 | 第39-42页 |
2.2.2 β-catenin CKO小鼠海马畸形 | 第42-44页 |
2.2.3 异位细胞最终分化为神经元 | 第44-46页 |
2.2.4 β-catenin CKO小鼠在E17.5时放射状胶质细胞和海马原基发育正常 | 第46-48页 |
2.2.5 β-catenin的敲除导致了放射状胶质细胞的异位投射和迁移 | 第48-52页 |
2.2.6 β-catenin阴性区域被GFAP阳性细胞占据 | 第52-55页 |
2.3 讨论 | 第55-56页 |
2.3.1 β-catenin在海马放射状胶质骨架维持中的作用 | 第55-56页 |
2.3.2 β-catenin介导的Wnt信号通路在海马细胞分化中的作用 | 第56页 |
2.4 本章小结 | 第56-58页 |
第3章 β-catenin影响摄食环路形成的研究 | 第58-77页 |
引言 | 第58-60页 |
3.1 实验材料与方法 | 第60-63页 |
3.1.1 主要仪器设备 | 第60页 |
3.1.2 主要实验试剂 | 第60页 |
3.1.3 实验动物 | 第60-61页 |
3.1.4 条件性基因敲除小鼠的繁育和基因型鉴定 | 第61页 |
3.1.5 Nissl染色 | 第61页 |
3.1.6 免疫荧光染色 | 第61页 |
3.1.7 瘦素leptin诱导C-fos免疫化学染色 | 第61-62页 |
3.1.8 定量PCR | 第62-63页 |
3.1.9 原位杂交 | 第63页 |
3.1.10 图像采集与处理 | 第63页 |
3.1.11 统计学分析 | 第63页 |
3.2 实验结果 | 第63-74页 |
3.2.1 β-catenin CKO鼠下丘脑中β-catenin表达变化 | 第63-65页 |
3.2.2 从P8开始β-catenin CKO小鼠的体重增长减慢 | 第65-68页 |
3.2.3 β-catenin CKO小鼠下丘脑中促进摄食和抑制摄食的神经肽表达均相应改变 | 第68-72页 |
3.2.4 β-catenin CKO小鼠中弓状核神经元到下一级神经元的投射无明显异常 | 第72-74页 |
3.3 讨论 | 第74-75页 |
3.4 本章小结 | 第75-77页 |
第4章 研究总结与展望 | 第77-79页 |
4.1 研究工作总结 | 第77-78页 |
4.1.1 β-catenin对海马发育作用的研究 | 第77页 |
4.1.2 β-catenin影响摄食环路形成的研究 | 第77-78页 |
4.2 全文结论 | 第78页 |
4.3 展望 | 第78-79页 |
参考文献 | 第79-95页 |
攻读博士期间主要研究成果 | 第95-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
附录 | 第97-101页 |