| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-29页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 沼泽红假单胞菌及其捕光复合体概述 | 第9-14页 |
| 1.2.1 沼泽红假单胞菌简介 | 第9-10页 |
| 1.2.2 捕光复合体概况 | 第10-11页 |
| 1.2.3 保守的LH1-RC结构 | 第11-14页 |
| 1.3 LH2光谱多样性及其产生机制研究进展 | 第14-27页 |
| 1.3.1 LH2光谱多样性 | 第14-15页 |
| 1.3.2 LH2光谱多样性的蛋白水平机制 | 第15-22页 |
| 1.3.3 沼泽红假单胞菌LH2光谱多样性的基因水平机制 | 第22-24页 |
| 1.3.4 沼泽红假单胞菌LH2/LH4的多肽组成研究 | 第24-25页 |
| 1.3.5 沼泽红假单胞菌LH2光谱多样性的调控机制 | 第25-27页 |
| 1.4 课题来源、研究思路及主要研究内容 | 第27-29页 |
| 第2章 光强对Rhodopseudomonas palustris CGA009光合特性的影响 | 第29-41页 |
| 2.1 材料和方法 | 第30-32页 |
| 2.1.1 材料 | 第30页 |
| 2.1.2 方法 | 第30-32页 |
| 2.2 结果 | 第32-38页 |
| 2.2.1 菌株生长特性 | 第32-33页 |
| 2.2.2 活细胞吸收光谱 | 第33-34页 |
| 2.2.3 光合色素含量分析 | 第34-35页 |
| 2.2.4 光合色素TLC指纹图谱和灰度分析 | 第35-38页 |
| 2.2.5 光合色素含量与LH2光谱多样性的关系分析 | 第38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 第3章 光强对Rhodopseudomonas palustris CGA009 pucBA基因的表达调控探究 | 第41-57页 |
| 3.1 材料和方法 | 第42-47页 |
| 3.1.1 材料 | 第42页 |
| 3.1.2 方法 | 第42-47页 |
| 3.2 结果 | 第47-54页 |
| 3.2.1 菌体生长 | 第47-48页 |
| 3.2.2 引物退火温度的摸索 | 第48-50页 |
| 3.2.3 荧光定量PCR标准曲线的建立 | 第50-51页 |
| 3.2.4 光强影响pucBA基因的表达 | 第51-54页 |
| 3.3 讨论 | 第54-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-57页 |
| 第4章 Rhodopseudomonas palustris CGA009外围捕光复合体的稳定性探究 | 第57-69页 |
| 4.1 材料和方法 | 第58-59页 |
| 4.1.1 材料 | 第58页 |
| 4.1.2 方法 | 第58-59页 |
| 4.2 结果 | 第59-67页 |
| 4.2.1 LH2细胞的稳定性 | 第59-63页 |
| 4.2.2 LH4细胞的稳定性 | 第63-67页 |
| 4.3 讨论 | 第67-68页 |
| 4.4 小结 | 第68-69页 |
| 第5章 结论与展望 | 第69-71页 |
| 5.1 结论 | 第69页 |
| 5.2 展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-81页 |
| 附录A Rhodopseudomonas palustris CGA009 pucAd缺失突变体的构建 | 第81-93页 |
| A1.1 材料和方法 | 第82-89页 |
| A1.1.1 材料 | 第82页 |
| A1.1.2 方法 | 第82-89页 |
| A1.2 结果 | 第89-90页 |
| A1.2.1 扩增U、D、UD片段及质粒提取 | 第89-90页 |
| A1.2.2 自杀载体构建 | 第90页 |
| A1.3 讨论 | 第90-93页 |
| 致谢 | 第93-95页 |
| 作者简介 | 第95页 |
