致谢 | 第6-7页 |
摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
缩略词 | 第17-20页 |
第一章 绪论 | 第20-44页 |
1.1 贻贝资源概述及研究进展 | 第20-32页 |
1.1.1 国内贻贝资源概况 | 第20页 |
1.1.2 贻贝软体部分的营养成分及价值 | 第20-23页 |
1.1.3 贻贝生物活性物研究进展 | 第23-29页 |
1.1.4 贻贝活性物的提取分离方法研究进展 | 第29-32页 |
1.2 肠道屏障保护机理与肠道损伤表现 | 第32-34页 |
1.2.1 肠道机械屏障 | 第32页 |
1.2.2 肠道生物屏障 | 第32-33页 |
1.2.3 肠道免疫屏障 | 第33页 |
1.2.4 肠道损伤的表现 | 第33-34页 |
1.3 贻贝脂质提取物与溃疡性结肠炎 | 第34-40页 |
1.3.1 溃疡性结肠炎概述 | 第34页 |
1.3.2 胞因子与溃疡性结肠炎 | 第34-36页 |
1.3.3 TLR4/NF-κB通路与溃疡性结肠炎 | 第36-38页 |
1.3.4 传统抗炎药物与溃疡性结肠炎的治疗 | 第38-40页 |
1.3.5 贻贝脂质提取物与溃疡性结肠炎的治疗 | 第40页 |
1.4 贻贝脂质提取物与类风湿性关节炎 | 第40-42页 |
1.4.1 类风湿性关节炎概述 | 第40-41页 |
1.4.2 贻贝脂质提取物与类风湿性关节炎的治疗 | 第41-42页 |
1.5 本课题的研究背景、研究目的和研究内容 | 第42-44页 |
1.5.1 研究背景 | 第42页 |
1.5.2 研究目的及意义 | 第42页 |
1.5.3 研究内容 | 第42-44页 |
第二章 贻贝脂质提取物在小鼠巨噬细胞炎症模型中的抗炎活性探索 | 第44-63页 |
2.1 引言 | 第44页 |
2.2 试验材料与仪器 | 第44-46页 |
2.2.1 主要材料 | 第44-45页 |
2.2.2 主要试剂 | 第45-46页 |
2.2.3 主要仪器设备 | 第46页 |
2.3 试验方法 | 第46-55页 |
2.3.1 主要试剂配制 | 第46-47页 |
2.3.2 RAW264.7小鼠巨噬细胞的培养 | 第47页 |
2.3.3 HMLE的细胞毒性评价 | 第47-49页 |
2.3.4 HMLE对RAW264.7细胞NO释放量的影响 | 第49页 |
2.3.5 HMLE对RAW264.7细胞炎症因子分泌量或炎症介质生成量的影响 | 第49-50页 |
2.3.6 HMLE对RAW264.7细胞中TLR4/NF-κB信号通路关键基因以及iNOS基因表达的影响 | 第50-53页 |
2.3.7 HMLE对RAW264.7细胞NF-κB激活的影响 | 第53-54页 |
2.3.8 数据处理 | 第54-55页 |
2.4 结果与分析 | 第55-61页 |
2.4.1 HMLE的细胞毒性评价 | 第55-57页 |
2.4.2 HMLE对RAW264.7细胞炎症因子分泌量及炎症介质生成量的影响 | 第57页 |
2.4.3 HMLE对RAW264.7巨噬细胞NO释放量以及iNOS基因表达的影响 | 第57-60页 |
2.4.4 HMLE对RAW264.7细胞TLR4/NF-κB信号通路中关键基因表达及关键信号分子激活的影响 | 第60-61页 |
2.5 讨论与小结 | 第61-63页 |
第三章 贻贝脂质提取物在小鼠肠道损伤模型中对肠道屏障的影响及其机理研究 | 第63-92页 |
3.1 引言 | 第63页 |
3.2 试验材料与仪器 | 第63-66页 |
3.2.1 主要材料 | 第63-64页 |
3.2.2 主要试剂 | 第64页 |
3.2.3 主要仪器设备 | 第64-66页 |
3.3 试验方法与设计 | 第66-74页 |
3.3.1 HMLE油脂的配置与剂量选取 | 第66页 |
3.3.2 小鼠分组与试验设计 | 第66-67页 |
3.3.3 样品的采集与预处理 | 第67-68页 |
3.3.4 红细胞磷脂脂肪酸检测 | 第68-69页 |
3.3.5 组织切片的制备及分析 | 第69-71页 |
3.3.6 生化指标的测定 | 第71-72页 |
3.3.7 血清及结肠组织中炎症因子的含量测定 | 第72页 |
3.3.8 结肠组织中炎症因子及TLR4/NF-κB通路关键信号分子基因表达的检测 | 第72-73页 |
3.3.9 结肠组织中TLR4/MAPK/NF-κB通路关键信号分子蛋白表达的检测 | 第73-74页 |
3.3.10 数据处理 | 第74页 |
3.4 结果与分析 | 第74-88页 |
3.4.1 HMLE对小鼠体重变化的影响 | 第74页 |
3.4.2 HMLE干预对小鼠红细胞磷脂脂肪酸的影响 | 第74-76页 |
3.4.3 HMLE对小鼠肠道机械屏障的保护作用评价 | 第76-81页 |
3.4.4 HMLE对小鼠血清及结肠组织中免疫平衡的调控 | 第81-86页 |
3.4.5 HMLE对小鼠结肠组织中TLR4/NF-κB信号通路中关键分子mRNA表达的调控 | 第86-87页 |
3.4.6 HMLE对小鼠结肠组织中MAPKs及NF-κB信号通路关键分子蛋白活化的调控 | 第87-88页 |
3.5 讨论与小结 | 第88-92页 |
第四章 贻贝脂质提取物在小鼠溃疡性结肠炎模型中对病情的影响及其机理研究 | 第92-120页 |
4.1 引言 | 第92页 |
4.2 试验材料与仪器 | 第92-93页 |
4.2.1 主要材料 | 第92-93页 |
4.2.2 主要试剂 | 第93页 |
4.2.3 主要仪器设备 | 第93页 |
4.3 试验方法与设计 | 第93-99页 |
4.3.1 HMLE油脂的配置与剂量选取 | 第93页 |
4.3.2 小鼠分组与试验设计 | 第93-94页 |
4.3.3 疾病活动指数(DAI)评分 | 第94-96页 |
4.3.4 样品的采集与预处理 | 第96页 |
4.3.5 组织切片的制备及分析 | 第96-97页 |
4.3.6 生化指标的测定 | 第97-99页 |
4.3.7 血清及结肠组织中炎症因子的含量测定 | 第99页 |
4.3.8 结肠组织中炎症因子及TLR4/NF-κB通路关键信号分子基因表达的检测 | 第99页 |
4.3.9 结肠组织中TLR4/MAPK/NF-κB通路关键信号分子蛋白表达的检测 | 第99页 |
4.3.10 数据处理 | 第99页 |
4.4 结果与分析 | 第99-115页 |
4.4.1 不同干预处理对小鼠造模后生存率、体重及疾病活动指数(DAI)的影响 | 第99-102页 |
4.4.2 小鼠结肠组织病理观察结果 | 第102-106页 |
4.4.3 不同干预处理对小鼠肝脏指数、脾脏指数和胸腺指数变化的影响 | 第106-107页 |
4.4.4 不同干预处理对小鼠结肠组织氧化应激水平及髓过氧化物酶(MPO)活性的影响 | 第107-108页 |
4.4.5 不同干预处理对小鼠结肠组织一氧化氮(NO)释放及诱导型一氧化氮合成酶(iNOS)表达的影响 | 第108-109页 |
4.4.6 不同干预处理对小鼠免疫平衡的影响 | 第109-113页 |
4.4.7 不同干预处理对结肠炎小鼠结肠组织中TLR4/MAPKs/NF-κB信号通路中关键分子mRNA及蛋白表达的调控 | 第113-115页 |
4.5 讨论与小结 | 第115-120页 |
第五章 贻贝脂质提取物对类风湿性关节炎患者临床症状改善作用的评价 | 第120-138页 |
5.1 引言 | 第120页 |
5.2 试验材料与仪器 | 第120-121页 |
5.2.1 主要材料 | 第120页 |
5.2.2 主要试剂 | 第120页 |
5.2.3 主要仪器设备 | 第120-121页 |
5.3 试验设计与方法 | 第121-125页 |
5.3.1 筛选标准及样本量确定 | 第121页 |
5.3.2 试验分组设计 | 第121-122页 |
5.3.3 实验室指标测定与临床评价方法 | 第122-125页 |
5.3.4 意向性分析(ITT analysis)和符合方案集分析(PP analysis) | 第125页 |
5.3.5 数据处理 | 第125页 |
5.4 结果与分析 | 第125-135页 |
5.4.1 受试者完成情况及基本数据 | 第125页 |
5.4.2 试食期间的不良反应评价 | 第125-127页 |
5.4.3 试食期间膳食营养素与能量摄入变化 | 第127页 |
5.4.4 基于DAS28评分的疾病活动度改善 | 第127页 |
5.4.5 基于CDAI评分的临床疾病指数改善 | 第127-130页 |
5.4.6 其他临床疗效指标的变化 | 第130-133页 |
5.4.7 HMLE试食对于血液脂肪酸组成及炎症因子变化的影响 | 第133-135页 |
5.5 讨论与小结 | 第135-138页 |
第六章 结论、创新点和研究展望 | 第138-140页 |
6.1 结论 | 第138页 |
6.2 创新点 | 第138-139页 |
6.3 研究展望 | 第139-140页 |
参考文献 | 第140-152页 |
作者简介及在读期间所取得的科研成果 | 第152-153页 |