| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 1 绪论 | 第15-32页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 埃洛石纳米管 | 第15-22页 |
| 1.2.1 埃洛石纳米管的简介 | 第15-16页 |
| 1.2.2 埃洛石纳米管的改性方法 | 第16-19页 |
| 1.2.3 埃洛石纳米管的应用现状 | 第19-22页 |
| 1.3 酶固定技术 | 第22-24页 |
| 1.3.1 物理吸附 | 第22-23页 |
| 1.3.2 共价键结合 | 第23页 |
| 1.3.3 交联结合 | 第23-24页 |
| 1.3.4 包埋固定 | 第24页 |
| 1.4 载体的选择 | 第24-26页 |
| 1.4.1 无机材料 | 第24-25页 |
| 1.4.2 天然高分子材料 | 第25页 |
| 1.4.3 合成高分子材料 | 第25-26页 |
| 1.5 固定酶的性质 | 第26-27页 |
| 1.5.1 固定化酶的活性与稳定性 | 第26页 |
| 1.5.2 最适反应条件的变化 | 第26-27页 |
| 1.6 漆酶简介 | 第27-30页 |
| 1.6.1 典型的漆酶反应体系 | 第27-29页 |
| 1.6.2 漆酶电子介体体系（LMS） | 第29-30页 |
| 1.7 研究内容与创新性 | 第30-32页 |
| 1.7.1 研究内容 | 第30-31页 |
| 1.7.2 研究的创新性 | 第31-32页 |
| 2 酶学性能测试方法 | 第32-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第32-34页 |
| 2.1.1 实验药品 | 第32页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第33-34页 |
| 2.2 漆酶的酶活测定 | 第34-35页 |
| 2.2.1 游离酶的活力测定 | 第34-35页 |
| 2.2.2 固定酶的活力测定 | 第35页 |
| 2.3 载体固定量的测定 | 第35-36页 |
| 2.4 米氏常数的测定 | 第36-39页 |
| 3 熔盐法改性HNTs及其酶固定性能 | 第39-58页 |
| 3.1 前言 | 第39-40页 |
| 3.2 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第40页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.3 试剂配制 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-45页 |
| 3.3.1 熔盐法改性埃洛石纳米管的机理 | 第41-42页 |
| 3.3.2 RHNTs的制备 | 第42页 |
| 3.3.3 RHNTs用于固定酶的研究 | 第42-43页 |
| 3.3.4 RHNTs及其固定酶的表征 | 第43-44页 |
| 3.3.5 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第44-45页 |
| 3.4 结果与分析 | 第45-57页 |
| 3.4.1 RHNTs及其固定酶的表征 | 第45-51页 |
| 3.4.2 RHNTs用于固定酶的研究 | 第51-53页 |
| 3.4.3 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第53-57页 |
| 3.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 4 PDDA改性HNTs及其酶固定性能 | 第58-79页 |
| 4.1 前言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验材料 | 第59-61页 |
| 4.2.1 实验药品 | 第59页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.3 试剂配制 | 第60-61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.3.1 聚二烯丙基二甲基氯化铵改性埃洛石纳米管的机理 | 第61页 |
| 4.3.2 PHNTs的制备 | 第61-62页 |
| 4.3.3 PHNTs用于固定酶的研究 | 第62页 |
| 4.3.4 PHNTs及其固定酶的表征 | 第62-63页 |
| 4.3.5 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第63页 |
| 4.3.6 对酚类污染物的降解 | 第63-64页 |
| 4.4 结果与分析 | 第64-77页 |
| 4.4.1 PHNTs及其固定酶的表征 | 第64-69页 |
| 4.4.2 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第69-76页 |
| 4.4.3 PHNTs固定酶用于去除 2,4-DCP的研究 | 第76-77页 |
| 4.5 本章小结 | 第77-79页 |
| 5 HNTs仿生微球的制备及其酶固定性能 | 第79-95页 |
| 5.1 前言 | 第79-80页 |
| 5.2 实验材料 | 第80-82页 |
| 5.2.1 实验药品 | 第80页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第80-81页 |
| 5.2.3 试剂配制 | 第81-82页 |
| 5.3 实验方法 | 第82-84页 |
| 5.3.1 HNTs仿生微球的合成机理 | 第82页 |
| 5.3.2 HNTs仿生微球的制备 | 第82-83页 |
| 5.3.3 HNTs仿生微球的表征 | 第83-84页 |
| 5.3.4 HNTs仿生微球用于固定酶的研究 | 第84页 |
| 5.4 结果与分析 | 第84-94页 |
| 5.4.1 HNTs仿生微球及其固定酶的表征 | 第84-89页 |
| 5.4.2 HNTs仿生微球固定酶与游离酶的酶学性能对比 | 第89-93页 |
| 5.4.3 HNTs仿生微球固定酶用于去除 2,4-DCP的研究 | 第93-94页 |
| 5.5 本章小结 | 第94-95页 |
| 6 PVA/HNTs复合颗粒的制备及其酶固定性能 | 第95-113页 |
| 6.1 前言 | 第95-96页 |
| 6.2 实验材料 | 第96-97页 |
| 6.2.1 实验药品 | 第96页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第96-97页 |
| 6.2.3 试剂配制 | 第97页 |
| 6.3 实验方法 | 第97-100页 |
| 6.3.1 PVA/HNTs复合颗粒的制备机理 | 第97-98页 |
| 6.3.2 PVA/HNTs复合颗粒及固定酶的制备 | 第98-99页 |
| 6.3.3 PVA/HNTs复合颗粒的表征 | 第99页 |
| 6.3.4 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第99-100页 |
| 6.3.5 对活性蓝染料的脱色研究 | 第100页 |
| 6.4 结果与分析 | 第100-112页 |
| 6.4.1 PVA/HNTs复合颗粒及其固定酶的表征 | 第100-104页 |
| 6.4.2 固定化酶与游离酶的酶学性能对比 | 第104-108页 |
| 6.4.3 PVA/HNTs复合颗粒固定酶用于去除活性蓝RB的研究 | 第108-112页 |
| 6.5 本章小结 | 第112-113页 |
| 7 结论与展望 | 第113-115页 |
| 7.1 结论 | 第113-114页 |
| 7.2 展望 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-128页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第128-129页 |
| 个人简历 | 第128页 |
| 学术论文 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
