| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 Caco-2 细胞简介 | 第12-13页 |
| 1.2 P-gp简介 | 第13-14页 |
| 1.3 咖啡酸苯乙酯的研究进展 | 第14-20页 |
| 1.3.1 咖啡酸苯乙酯概述 | 第14-15页 |
| 1.3.2 咖啡酸苯乙酯抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
| 1.3.3 咖啡酸苯乙酯抗氧化作用 | 第16-17页 |
| 1.3.4 咖啡酸苯乙酯抗炎作用 | 第17-18页 |
| 1.3.5 咖啡酸苯乙酯免疫调节的作用 | 第18-19页 |
| 1.3.6 咖啡酸苯乙酯药代动力学研究 | 第19-20页 |
| 第2章 引言 | 第20-22页 |
| 第3章 CAPE-NO_2大鼠体内血药浓度的研究 | 第22-30页 |
| 3.1 实验材料 | 第22页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 3.1.2 试剂 | 第22页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 3.2.1 药物的合成 | 第22-23页 |
| 3.2.2 工作液的制备 | 第23页 |
| 3.2.3 样品采集 | 第23页 |
| 3.2.4 生物样品的处理 | 第23-24页 |
| 3.2.5 色谱条件 | 第24页 |
| 3.2.6 系统适用性 | 第24-25页 |
| 3.3 结果 | 第25-29页 |
| 3.3.1 系统适用性 | 第25-28页 |
| 3.3.2 血药浓度及药动学参数 | 第28-29页 |
| 3.4 讨论 | 第29-30页 |
| 第4章 Caco-2 细胞模型研究CAPE和CAPE-NO_2吸收机制 | 第30-36页 |
| 4.1 实验材料 | 第30页 |
| 4.1.1 细胞培养 | 第30页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第30页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第30页 |
| 4.2 实验方法 | 第30-32页 |
| 4.2.1 细胞单层模型的建立 | 第30-31页 |
| 4.2.3 MTT实验 | 第31页 |
| 4.2.4 药物跨膜转运实验 | 第31-32页 |
| 4.2.5 分析方法的建立 | 第32页 |
| 4.2.6 数据处理 | 第32页 |
| 4.3 实验结果 | 第32-34页 |
| 4.3.1 MTT实验 | 第32-33页 |
| 4.3.2 细胞跨膜转运实验 | 第33-34页 |
| 4.4 讨论 | 第34-36页 |
| 第5章 CAPE和CAPE-NO_2对P-gp功能的影响 | 第36-42页 |
| 5.1 实验材料 | 第36页 |
| 5.1.1 仪器 | 第36页 |
| 5.1.2 药品与试剂 | 第36页 |
| 5.2 实验方法 | 第36-38页 |
| 5.2.1 相关试剂的配制 | 第36-37页 |
| 5.2.2 BCA法蛋白含量测定 | 第37页 |
| 5.2.3 CAPE和CAPE-NO_2对Rhl23细胞内积累的影响 | 第37页 |
| 5.2.4 CAPE和CAPE-NO_2对digoxin转运的影响 | 第37-38页 |
| 5.3 实验结果 | 第38-40页 |
| 5.3.1 蛋白标准曲线的建立 | 第38页 |
| 5.3.2 CAPE和CAPE-NO_2对Rhl23细胞内积累的影响 | 第38-39页 |
| 5.3.3 CAPE和CAPE-NO_2对digoxin转运的影响 | 第39-40页 |
| 5.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第6章 CAPE和CAPE-NO_2对P-gp表达的影响 | 第42-48页 |
| 6.1 实验仪器与材料 | 第42-44页 |
| 6.1.1 仪器设备 | 第42页 |
| 6.1.2 试剂 | 第42-44页 |
| 6.2 实验方法 | 第44-45页 |
| 6.2.1 细胞给药方法 | 第44页 |
| 6.2.2 总蛋白的提取 | 第44页 |
| 6.2.3 总蛋白的测定 | 第44页 |
| 6.2.4 Western blot分析P-gp的变化 | 第44-45页 |
| 6.3 统计学分析 | 第45-46页 |
| 6.4 结果 | 第46-47页 |
| 6.5 讨论 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第62页 |
