| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-16页 |
| 前言 | 第16-28页 |
| 1 猫眼草中黄酮类物质的提取 | 第28-40页 |
| ·前言 | 第28-29页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·药品与试剂 | 第29页 |
| ·实验仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-33页 |
| ·定量原理 | 第29页 |
| ·方法设计 | 第29-31页 |
| ·实验流程 | 第31-33页 |
| ·实验结果 | 第33-36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| 小结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 2 利用血清药理学手段，在细胞水平确定猫眼草黄酮类粗提物的抗肿瘤作用 | 第40-62页 |
| ·前言 | 第40-41页 |
| ·实验材料 | 第41-43页 |
| ·药品与试剂和主要耗材 | 第41-42页 |
| ·实验仪器 | 第42页 |
| ·实验动物 | 第42页 |
| ·肿瘤细胞株培养 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-45页 |
| ·猫眼草黄酮类粗提物含药血清的制备 | 第43页 |
| ·正常兔血清对 A549 细胞生长的影响 | 第43页 |
| ·含药兔血清不同浓度对A549 细胞生长的影响 | 第43-44页 |
| ·含药兔血清作用不同时间对A549 细胞生长的影响 | 第44页 |
| ·含药兔血清对 A549 细胞周期的影响 | 第44页 |
| ·线粒体膜电位检测 | 第44-45页 |
| ·Western Blot 检测 | 第45页 |
| ·统计学处理 | 第45页 |
| ·实验结果 | 第45-56页 |
| ·正常兔血清对 A549 细胞生长的影响 | 第45-47页 |
| ·含药兔血清浓度对A549 细胞生长的影响 | 第47-48页 |
| ·含药兔血清孵育时间对A549 细胞生长的影响 | 第48-50页 |
| ·含药兔血清对A549 细胞周期的影响 | 第50-52页 |
| ·含药兔血清引起A549 细胞凋亡相关蛋白的改变 | 第52-54页 |
| ·含药兔血清破坏 A549 细胞线粒体膜电位 | 第54-56页 |
| ·讨论 | 第56-59页 |
| 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 3 猫眼草黄酮类粗提物对Lewis肺癌小鼠肿瘤模型的抗肿瘤作用研究 | 第62-75页 |
| ·前言 | 第62-63页 |
| ·实验材料 | 第63-65页 |
| ·药品与试剂 | 第63-64页 |
| ·实验器材 | 第64页 |
| ·实验动物 | 第64页 |
| ·荷瘤动物模型的建立 | 第64-65页 |
| ·观察指标 | 第65页 |
| ·统计学处理 | 第65页 |
| ·实验结果 | 第65-70页 |
| ·一般观察 | 第65-66页 |
| ·猫眼草黄酮类粗提物体内对荷Lewis 肺癌小鼠肿瘤生长的影响 | 第66-68页 |
| ·猫眼草黄酮类粗提物体内对荷Lewis 肺癌小鼠免疫器官的影响 | 第68-70页 |
| ·讨论 | 第70-72页 |
| 小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 4 猫眼草中黄酮类物质的活性追踪及结构鉴定 | 第75-88页 |
| ·前言 | 第75页 |
| ·实验材料 | 第75-77页 |
| ·药品与试剂 | 第75-76页 |
| ·实验仪器 | 第76-77页 |
| ·实验方法 | 第77-80页 |
| ·猫眼草浸提物的分离纯化 | 第77-79页 |
| ·生物活性测试 | 第79-80页 |
| ·实验结果 | 第80-86页 |
| ·结构鉴定 | 第80-82页 |
| ·活性评价 | 第82-84页 |
| ·乙酸乙酯萃取浸提液浸膏诱导A549 细胞发生周期阻滞的作用 | 第84-85页 |
| ·乙酸乙酯萃取浸提液浸膏诱导A549 细胞发生凋亡 | 第85-86页 |
| ·讨论 | 第86页 |
| 小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-88页 |
| 5 猫眼草活性部位抗肿瘤机制研究 | 第88-100页 |
| ·前言 | 第88-89页 |
| ·实验材料 | 第89-90页 |
| ·试剂和耗材 | 第89-90页 |
| ·实验仪器 | 第90页 |
| ·实验方法 | 第90-92页 |
| ·蛋白酪氨酸激酶分子水平筛选 | 第90-91页 |
| ·细胞水平检测猫眼草活性成分EA 对 EGFR 酪氨酸激酶的抑制活性 | 第91页 |
| ·Western blot 检测相关信号的变化 | 第91-92页 |
| ·HMEC 细胞迁移实验 | 第92页 |
| ·HMEC 细胞管腔形成实验 | 第92页 |
| ·实验结果 | 第92-96页 |
| ·EA 分子水平抑制蛋白酪氨酸激酶的活性 | 第92-93页 |
| ·EA 对细胞内受体酪氨酸激酶活性的影响 | 第93-94页 |
| ·EA 对 EGFR 相关信号的影响 | 第94页 |
| ·EA 抑制 HMEC 细胞迁移 | 第94-95页 |
| ·EA 抑制 HMEC 细胞管腔形成 | 第95-96页 |
| ·讨论 | 第96-97页 |
| 小结 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-100页 |
| 综述 | 第100-122页 |
| 参考文献 | 第111-122页 |
| 结论 | 第122-123页 |
| 创新 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124-125页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第125页 |
