摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1.1 双酚A | 第11-13页 |
1.1.1 双酚A概述 | 第11页 |
1.1.2 水环境中BPA存在现状 | 第11-12页 |
1.1.3 BPA的危害作用 | 第12-13页 |
1.2 BPA与氧化应激反应 | 第13-14页 |
1.2.1 氧化应激反应与自由基 | 第13页 |
1.2.2 活性氧(ROS) | 第13页 |
1.2.3 一氧化氮(NO)及诱导型一氧化氮合酶(iNOS) | 第13-14页 |
1.2.4 BPA与氧化应激反应 | 第14页 |
1.3 BPA对鱼类的免疫调节 | 第14-16页 |
1.3.1 细胞因子 | 第14-15页 |
1.3.2 BPA对鱼类的免疫调节作用 | 第15页 |
1.3.3 BPA对免疫系统影响的作用机制 | 第15-16页 |
1.4 TOLL-LIKE信号通路 | 第16页 |
1.5 氧化应激反应与免疫之间的关系研究进展 | 第16-17页 |
1.6 BPA对雄性生殖的影响 | 第17-19页 |
1.6.1 血睾屏障概述 | 第17-18页 |
1.6.2 EDCs调节血睾屏障的作用机制 | 第18页 |
1.6.3 细胞因子与BTB间相互作用 | 第18-19页 |
1.7 稀有鮈鲫 | 第19页 |
1.8 本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
第二章 BPA诱导稀有鮈鲫幼鱼氧化应激反应及免疫相关基因表达的研究 | 第20-28页 |
2.1 试验材料与方法 | 第20-22页 |
2.1.1 稀有鮈鲫 | 第20页 |
2.1.2 试验试剂及仪器 | 第20页 |
2.1.3 暴露试验及采样 | 第20-21页 |
2.1.4 H_2O_2和NO含量的测定 | 第21页 |
2.1.5 RNA的提取及反转 | 第21页 |
2.1.6 实时定量PCR | 第21-22页 |
2.1.7 数据分析 | 第22页 |
2.2 试验结果与分析 | 第22-25页 |
2.2.1 BPA对稀有鮈鲫幼鱼形态学指标影响 | 第22-23页 |
2.2.2 BPA对H_2O_2含量的影响 | 第23页 |
2.2.3 组织中NO的产生及诱导型一氧化氮合酶(iNOS)基因表达量的变化 | 第23-24页 |
2.2.4 BPA暴露后对细胞因子相关基因表达的影响 | 第24页 |
2.2.5 BPA对TLRs信号通路中基因表达的影响 | 第24-25页 |
2.3 讨论 | 第25-27页 |
2.3.1 BPA对氧化应激和免疫相关基因表达的影响 | 第25-26页 |
2.3.2 BPA对NO含量及相关基因表达的影响 | 第26页 |
2.3.3 BPA对TLRs信号通路相关基因表达的影响 | 第26-27页 |
2.3.4 BPA暴露下TLRs信号通路与氧化应激 | 第27页 |
2.4 小结 | 第27-28页 |
第三章 BPA对稀有鮈鲫雄鱼支持细胞屏障损伤的研究 | 第28-40页 |
3.1 试验材料与方法 | 第28-30页 |
3.1.1 试验用鱼 | 第28页 |
3.1.2 试验试剂及仪器 | 第28页 |
3.1.3 暴露与取样 | 第28-29页 |
3.1.4 稀有鮈鲫体内SCs屏障完整性的测定 | 第29页 |
3.1.5 Western Blot检测稀有鮈鲫精巢Occludin,β-catenin和TNFα 蛋白表达量 | 第29页 |
3.1.6 组织切片和免疫组化分析BPA对稀有鮈鲫精巢的损伤作用 | 第29-30页 |
3.1.7 RNA的提取及反转 | 第30页 |
3.1.8 实时定量PCR | 第30页 |
3.1.9 数据分析 | 第30页 |
3.2 试验结果与分析 | 第30-37页 |
3.2.1 BPA暴露后对稀有鮈鲫精巢形态学指标和GSI的影响 | 第30-31页 |
3.2.2 BPA暴露后对稀有鮈鲫精巢组织学的影响 | 第31-32页 |
3.2.3 BPA暴露后精巢中细胞因子TNFα 蛋白水平的变化 | 第32-33页 |
3.2.4 BPA暴露后对精巢SCs屏障的干扰作用 | 第33-34页 |
3.2.5 BPA暴露后对精巢SCs屏障相关蛋白表达的影响 | 第34-36页 |
3.2.6 BPA暴露后对Occludin、β-catenin以及p38 MAPK基因表达的影响 | 第36-37页 |
3.3 讨论 | 第37-39页 |
3.4 小结 | 第39-40页 |
第四章 结论、创新点 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-50页 |
附录 | 第50-64页 |
缩略词 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
作者简介 | 第66页 |