| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第13-25页 |
| 1.1 土壤盐渍化和重金属污染现状及危害 | 第13-14页 |
| 1.2 胁迫环境对植物活化和吸收重金属的影响 | 第14-18页 |
| 1.2.1 胁迫环境下根系分泌物的变化对重金属活化影响 | 第14-15页 |
| 1.2.2 胁迫环境下根细胞壁特征的变化对重金属积累影响 | 第15-16页 |
| 1.2.3 胁迫环境下植物离子平衡、渗透调节和抗氧化特征的变化对重金属跨膜运输的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.4 盐分胁迫下微生物群落变化对重金属活化的影响 | 第17-18页 |
| 1.3 植物响应环境胁迫的组学方法研究概况 | 第18-22页 |
| 1.3.1 转录组学研究 | 第18-19页 |
| 1.3.2 蛋白质组学研究 | 第19-20页 |
| 1.3.3 代谢组学研究 | 第20-22页 |
| 1.4 研究背景、目的和意义 | 第22页 |
| 1.5 主要研究内容和技术路线图 | 第22-24页 |
| 1.6 主要创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 盐分胁迫下苋菜对重金属Cd活化、吸收和累积特征 | 第25-35页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第25-28页 |
| 2.1.1 土壤盆栽试验设计和植物收获 | 第25-26页 |
| 2.1.2 水培试验设计和植物收获 | 第26-27页 |
| 2.1.3 重金属Cd测定和土壤pH测定 | 第27页 |
| 2.1.4 数据统计分析 | 第27-28页 |
| 2.2 结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.2.1 盐分胁迫下土培苋菜土壤离心溶液重金属Cd和根际土pH变化 | 第28-29页 |
| 2.2.2 盐分胁迫下土培苋菜生物量和苋菜重金属Cd含量变化 | 第29-32页 |
| 2.2.3 盐分胁迫下水培苋菜生物量、苋菜根和茎叶Cd变化 | 第32-33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-34页 |
| 2.3.1 盐分胁迫下土壤重金属Cd活化增加促进苋菜体内Cd积累 | 第33-34页 |
| 2.3.2 柳叶苋菜强Cd活化能力提高Cd体内积累 | 第34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第三章 盐分胁迫下苋菜的代谢响应研究 | 第35-64页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第35-38页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第35页 |
| 3.1.2 代谢物提取与分析 | 第35-36页 |
| 3.1.3 方法可靠性验证 | 第36页 |
| 3.1.4 代谢组数据解析 | 第36-37页 |
| 3.1.5 数据统计分析 | 第37-38页 |
| 3.2 结果与分析 | 第38-57页 |
| 3.2.1 方法可靠性验证结果 | 第38-39页 |
| 3.2.2 代谢物谱库信息 | 第39-41页 |
| 3.2.3 盐分胁迫下土培苋菜根际代谢物含量变化 | 第41-45页 |
| 3.2.4 盐分胁迫下土培苋菜根代谢物含量变化 | 第45-50页 |
| 3.2.5 盐分胁迫下土培苋菜叶代谢物含量变化 | 第50-55页 |
| 3.2.6 盐分胁迫下水培苋菜根系分泌物含量变化 | 第55-57页 |
| 3.3 讨论 | 第57-62页 |
| 3.3.1 盐分胁迫下苋菜根际有机酸积累增加促进土壤重金属Cd的活化 | 第57-60页 |
| 3.3.2 盐分胁迫促进苋菜根有机酸分泌 | 第60-61页 |
| 3.3.3 盐分胁迫下苋菜根和叶的代谢响应调节 | 第61-62页 |
| 3.4 小结 | 第62-64页 |
| 第四章 苋菜DSN文库转录组de novo测序与分析 | 第64-86页 |
| 4.1 试验材料与方法 | 第64-68页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第64页 |
| 4.1.2 RNA样品提取 | 第64页 |
| 4.1.3 RNA样品质量检测 | 第64-65页 |
| 4.1.4 高通量测序 | 第65-66页 |
| 4.1.5 测序数据过滤 | 第66页 |
| 4.1.6 de novo组装 | 第66-67页 |
| 4.1.7 Unigene功能注释 | 第67页 |
| 4.1.8 蛋白编码区预测 | 第67-68页 |
| 4.1.9 转录因子预测 | 第68页 |
| 4.1.10 简单重复序列预测 | 第68页 |
| 4.2 结果与分析 | 第68-83页 |
| 4.2.1 测序数据质量 | 第68-71页 |
| 4.2.2 De novo组装结果 | 第71-74页 |
| 4.2.3 功能注释结果 | 第74-80页 |
| 4.2.4 CDS预测结果 | 第80-81页 |
| 4.2.5 TF编码预测结果 | 第81-82页 |
| 4.2.6 SSR检测结果 | 第82-83页 |
| 4.3 讨论 | 第83-84页 |
| 4.4 小结 | 第84-86页 |
| 第五章 盐分胁迫下苋菜根数字表达谱分析 | 第86-119页 |
| 5.1 试验材料与方法 | 第86-92页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第86页 |
| 5.1.2 样品RNA提取 | 第86页 |
| 5.1.3 RNA样品质量检测 | 第86-87页 |
| 5.1.4 表达谱测序 | 第87-88页 |
| 5.1.5 数据过滤 | 第88页 |
| 5.1.6 数据比对 | 第88页 |
| 5.1.7 qPCR验证 | 第88-90页 |
| 5.1.8 基因定量 | 第90页 |
| 5.1.9 差异基因筛选 | 第90-91页 |
| 5.1.10 GO富集分析 | 第91页 |
| 5.1.11 Pathway富集分析 | 第91-92页 |
| 5.3 结果与分析 | 第92-113页 |
| 5.3.1 测序质量和数据比对结果 | 第92页 |
| 5.3.2 qPCR验证结果 | 第92-94页 |
| 5.3.3 苋菜根的表达谱差异基因筛选 | 第94-95页 |
| 5.3.4 差异表达基因的GO功能聚类及富集分析结果 | 第95-104页 |
| 5.3.5 差异表达基因的KEGG富集分析 | 第104-106页 |
| 5.3.6 盐分胁迫下苋菜根内有机酸代谢和外排相关功能基因的表达变化 | 第106页 |
| 5.3.7 盐分胁迫下苋菜根细胞壁生物合成相关功能基因的表达变化 | 第106-107页 |
| 5.3.8 盐分胁迫下苋菜根内与离子吸收和转运相关基因的表达变化 | 第107-113页 |
| 5.4 讨论 | 第113-117页 |
| 5.4.1 苋菜根响应盐分胁迫的转录组比较分析 | 第113页 |
| 5.4.2 盐分胁迫下苋菜根有机酸分泌增加促进土壤Cd的活化 | 第113-115页 |
| 5.4.3 盐分胁迫下苋菜根细胞壁生物合成受抑制促进苋菜对Cd的吸收 | 第115-116页 |
| 5.4.4 盐分胁迫下与离子吸收和转运相关基因的表达变化对苋菜Cd吸收和积累的影响机制 | 第116-117页 |
| 5.5 小结 | 第117-119页 |
| 第六章 结论与展望 | 第119-122页 |
| 6.1 结论 | 第119-120页 |
| 6.2 展望 | 第120-122页 |
| 缩写词表 | 第122-124页 |
| 参考文献 | 第124-133页 |
| 附录 | 第133-138页 |
| 发表论文情况 | 第138-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
