| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第14-21页 |
| 1.1 虎杖简介 | 第14-15页 |
| 1.1.1 蒽醌类化合物 | 第14页 |
| 1.1.2 芪类化合物 | 第14-15页 |
| 1.1.3 黄酮类化合物 | 第15页 |
| 1.1.4 虎杖中其它成分 | 第15页 |
| 1.1.5 虎杖国内分布 | 第15页 |
| 1.2 白藜芦醇概述 | 第15-17页 |
| 1.2.1 白藜芦醇的药用价值 | 第15-16页 |
| 1.2.2 白藜芦醇的检测手段 | 第16页 |
| 1.2.3 白藜芦醇的提取方法 | 第16页 |
| 1.2.4 白藜芦醇的纯化方法 | 第16-17页 |
| 1.3 黄酮类化合物概述 | 第17-18页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物的药用价值 | 第17页 |
| 1.3.2 黄酮类化合物的检测手段 | 第17-18页 |
| 1.3.3 黄酮类化合物的提取方法 | 第18页 |
| 1.3.4 黄酮类化合物的纯化方法 | 第18页 |
| 1.4 大孔吸附树脂 | 第18-19页 |
| 1.4.1 大孔吸附树脂性质 | 第19页 |
| 1.4.2 大孔吸附树脂分离原理 | 第19页 |
| 1.4.3 大孔吸附树脂分离中药有效成分中的应用 | 第19页 |
| 1.5 虎杖中白藜芦醇和黄酮类化合物在提取和分离纯化中存在的问题 | 第19-20页 |
| 1.6 本论文的工作设想 | 第20-21页 |
| 第2章 酶解法提取虎杖中白藜芦醇 | 第21-28页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料及仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验过程 | 第22-23页 |
| 2.3.1 标准品溶液的制备 | 第22页 |
| 2.3.2 HPLC测定白藜芦醇的色谱条件 | 第22页 |
| 2.3.3 虎杖中白藜芦醇的提取实验 | 第22-23页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第23-27页 |
| 2.4.1 酶用量对白藜芦醇Er的影响 | 第23页 |
| 2.4.2 提取温度对白藜芦醇Er的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.3 提取液pH对白藜芦醇Er的影响 | 第24页 |
| 2.4.4 提取时间对白藜芦醇Er的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.5 固液比对白藜芦醇Er的影响 | 第25页 |
| 2.4.6 提取次数对白藜芦醇Er的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.7 正交设计优化提取工艺 | 第26-27页 |
| 2.5 本章小结 | 第27-28页 |
| 第3章 MARs对虎杖中白藜芦醇的分离纯化研究 | 第28-47页 |
| 3.1 引言 | 第28页 |
| 3.2 实验材料及仪器 | 第28页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第28页 |
| 3.3 实验过程 | 第28-32页 |
| 3.3.1 标准品溶液的制备 | 第28页 |
| 3.3.2 HPLC测定白藜芦醇的色谱条件 | 第28-30页 |
| 3.3.3 MAR含水率的测定 | 第30页 |
| 3.3.4 MAR的活化与纯化 | 第30页 |
| 3.3.5 MAR对虎杖中白藜芦醇的吸附/解吸附实验 | 第30-32页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第32-45页 |
| 3.4.1 MAR混合床类型筛选 | 第32-36页 |
| 3.4.2 MAR混合床吸附动力学研究 | 第36-40页 |
| 3.4.3 MAR混合床吸附热力学研究 | 第40-42页 |
| 3.4.4 吸附液pH对吸附率和纯度的影响 | 第42页 |
| 3.4.5 吸附温度对吸附率和纯度的影响 | 第42页 |
| 3.4.6 吸附液体积对吸附率和纯度的影响 | 第42-43页 |
| 3.4.7 吸附时间对吸附率和纯度的影响 | 第43页 |
| 3.4.8 解吸时间对解吸率和纯度的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.9 解吸液乙醇体积分数对解吸率和纯度的影响 | 第44页 |
| 3.4.10 解吸液pH对解吸率和纯度的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.11 解吸温度对解吸率和纯度的影响 | 第45页 |
| 3.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 预处理辅助MARs分离纯化白藜芦醇 | 第47-55页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验材料及仪器 | 第47页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47页 |
| 4.3 实验过程 | 第47-49页 |
| 4.3.1 HPLC色谱条件 | 第47页 |
| 4.3.2 白藜芦醇标准溶液配置 | 第47页 |
| 4.3.3 白藜芦醇提取实验 | 第47-48页 |
| 4.3.4 白藜芦醇的萃取实验 | 第48页 |
| 4.3.5 TLC板的制备 | 第48页 |
| 4.3.6 硅胶柱层析洗脱剂的确定 | 第48页 |
| 4.3.7 硅胶柱层析分离纯化白藜芦醇 | 第48-49页 |
| 4.3.8 MAR混合床分离纯化白藜芦醇 | 第49页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第49-54页 |
| 4.4.1 TLC薄层层析法选择洗脱溶剂 | 第49-51页 |
| 4.4.2 白藜芦醇萃取剂的选择 | 第51页 |
| 4.4.3 萃取体积比研究 | 第51-52页 |
| 4.4.4 萃取时间间隔研究 | 第52-53页 |
| 4.4.5 萃取次数研究 | 第53页 |
| 4.4.6 硅胶柱层析法纯化白藜芦醇 | 第53-54页 |
| 4.4.7 MAR混合床纯化白藜芦醇 | 第54页 |
| 4.5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 响应面法优化超声辅助提取虎杖中黄酮工艺研究 | 第55-64页 |
| 5.1 引言 | 第55页 |
| 5.2 实验材料及仪器 | 第55页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第55页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第55页 |
| 5.3 实验过程 | 第55-57页 |
| 5.3.1 对照品溶液的制备 | 第55-56页 |
| 5.3.2 黄酮紫外最大吸收波长及标准曲线的确定 | 第56页 |
| 5.3.3 虎杖总黄酮的提取实验 | 第56-57页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第57-63页 |
| 5.4.1 乙醇体积分数对黄酮Er的影响 | 第57页 |
| 5.4.2 固液比对黄酮Er的影响 | 第57页 |
| 5.4.3 提取温度对黄酮Er的影响 | 第57-58页 |
| 5.4.4 提取时间对黄酮Er的影响 | 第58页 |
| 5.4.5 超声功率对黄酮Er的影响 | 第58-59页 |
| 5.4.6 提取次数对黄酮Er的影响 | 第59页 |
| 5.4.7 中心组合设计实验结果 | 第59-61页 |
| 5.4.8 响应面结果分析 | 第61-62页 |
| 5.4.9 最优工艺验证实验 | 第62-63页 |
| 5.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第6章 MARs对虎杖中黄酮的分离纯化研究 | 第64-78页 |
| 6.1 引言 | 第64页 |
| 6.2 实验材料及仪器 | 第64页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第64页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第64页 |
| 6.3 实验过程 | 第64-65页 |
| 6.3.1 对照品溶液的制备 | 第64页 |
| 6.3.2 黄酮紫外最大吸收波长及标准曲线的确定 | 第64页 |
| 6.3.3 MAR含水率的测定 | 第64页 |
| 6.3.4 MAR的活化与纯化 | 第64-65页 |
| 6.3.5 MAR对虎杖黄酮的吸附/解吸附实验 | 第65页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第65-76页 |
| 6.4.1 MAR混合床类型筛选 | 第65-68页 |
| 6.4.2 MAR的吸附动力学研究 | 第68-71页 |
| 6.4.3 MAR的吸附热力学研究 | 第71-72页 |
| 6.4.4 吸附液乙醇体积分数对吸附率和纯度的影响 | 第72-73页 |
| 6.4.5 吸附温度对吸附率和纯度的影响 | 第73-74页 |
| 6.4.6 吸附液体积对吸附率和纯度的影响 | 第74页 |
| 6.4.7 吸附时间对吸附率和纯度的影响 | 第74-75页 |
| 6.4.8 解吸时间对解吸率和纯度的影响 | 第75页 |
| 6.4.9 解吸液乙醇体积分数对解吸率和纯度的影响 | 第75页 |
| 6.4.10 解吸温度对解吸率和纯度的影响 | 第75-76页 |
| 6.4.11 解吸液体积对解吸率和纯度的影响 | 第76页 |
| 6.5 本章小结 | 第76-78页 |
| 结论 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文及获奖 | 第89页 |
