| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-22页 |
| 研究现状、成果 | 第16-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-22页 |
| 一、血清mi RNA作为Ⅱ、Ⅲ 期CRC标志物的研究 | 第22-52页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-27页 |
| 1.1.1 研究对象和样品收集 | 第22-24页 |
| 1.1.2 主要仪器设备和试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 1.1.4 数据分析 | 第27页 |
| 1.2 结果 | 第27-50页 |
| 1.2.1 课题总的的设计策略 | 第27-28页 |
| 1.2.2 三组混合血清低密度芯片测序结果 | 第28-40页 |
| 1.2.3 运用RT-qPCR技术对低密度芯片初筛的结果进行复筛 | 第40-44页 |
| 1.2.4 运用RT-qPCR对Ⅱ、Ⅲ期结直肠癌患者特异血清miRNA表达谱的验证 | 第44-46页 |
| 1.2.5 特异表达的血清mi RNA的ROC曲线分析 | 第46-47页 |
| 1.2.6 特异变化的血清miRNA对患者生存预测的Kaplan-Meier曲线 | 第47-50页 |
| 1.3 讨论 | 第50-51页 |
| 1.4 小结 | 第51-52页 |
| 二、血清mi RNA作为mCRC化疗敏感性标志物的研究 | 第52-67页 |
| 2.1 对象和方法 | 第52-55页 |
| 2.1.1 研究对象和样品收集 | 第52-54页 |
| 2.1.2 主要仪器设备和试剂 | 第54页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第54-55页 |
| 2.1.4 数据分析 | 第55页 |
| 2.2 结果 | 第55-65页 |
| 2.2.1 课题总的的设计策略 | 第55-56页 |
| 2.2.2 FOLFOX/FOLFIRI方案治疗敏感组与不敏感组血清低密度芯片检测结果 | 第56-59页 |
| 2.2.3 运用RT-qPCR技术对低密度芯片初筛的结果进行复筛 | 第59-60页 |
| 2.2.4 运用RT-qPCR对化疗敏感性血清miRNA表达谱的验证 | 第60-61页 |
| 2.2.5 几种变化mi RNA对疗效预测效果的ROC曲线 | 第61-62页 |
| 2.2.6 RT-qPCR技术检测两种mi RNA在治疗后的变化 | 第62-64页 |
| 2.2.7 两种血清mi RNA对患者生存预测的Kaplan-Meier曲线 | 第64-65页 |
| 2.3 讨论 | 第65-66页 |
| 2.4 小结 | 第66-67页 |
| 三．miR-135b参与CRC发生发展分子机制的研究 | 第67-90页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第67-79页 |
| 3.1.1 组织样本 | 第67页 |
| 3.1.2 实验细胞 | 第67页 |
| 3.1.3 实验试剂和抗体 | 第67-68页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第68-69页 |
| 3.1.5 实验方法 | 第69-79页 |
| 3.2 实验结果 | 第79-88页 |
| 3.2.1 miR-135b在CRC患者血清中中表达升高 | 第79页 |
| 3.2.2 miR-135b在CRC组织中表达 | 第79-80页 |
| 3.2.3 生物信息学预测mi R-135b潜在靶基因 | 第80-81页 |
| 3.2.4 CRC癌组织及癌旁组织TGFBR2的mRNA及蛋白含量测定 | 第81-82页 |
| 3.2.5 荧光素酶实验证实TGFBR2是miR-135b的靶基因 | 第82-83页 |
| 3.2.6 Western bot实验证实mi R-135b下调TGFBR2的表达 | 第83-85页 |
| 3.2.7 过表达或敲低TGFBR2对结肠癌细胞功能的影响 | 第85-87页 |
| 3.2.8 CCK-8 细胞增殖实验证实miR-135b通过下调TGFBR2促进结肠癌细胞增殖 | 第87页 |
| 3.2.9 细胞凋亡实验证实miR-135b通过下调TGFBR2抑制结肠癌细胞调亡 | 第87-88页 |
| 3.3 讨论 | 第88-89页 |
| 3.4 小结 | 第89-90页 |
| 全文结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-108页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第108-109页 |
| 综述 miRNA与肿瘤研究进展 | 第109-133页 |
| 参考文献 | 第123-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
