| 摘要 | 第8-14页 |
| Abstract | 第14-21页 |
| 符号说明 | 第22-26页 |
| 第一部分 文献综述 | 第26-58页 |
| 综述一 神经干细胞巢对神经干细胞的影响及中医药的作用 | 第26-46页 |
| 1 NSCs niche形态学特征 | 第26-27页 |
| 1.1 SVZ niche | 第26-27页 |
| 1.2 SGZ niche | 第27页 |
| 2 NSCs niche生物学特征 | 第27-32页 |
| 2.1 支持细胞对NSCs的影响 | 第27-30页 |
| 2.2 细胞因子对NSCs的影响 | 第30-31页 |
| 2.3 细胞外基质对NSCs niche的影响 | 第31-32页 |
| 3 微血管网对NSCs niche的影响 | 第32-33页 |
| 3.1 生理调节机制 | 第33页 |
| 3.2 病理调节机制 | 第33页 |
| 4 神经发生与血管生成之间的协同作用 | 第33-34页 |
| 5 中医与NSCs的关系 | 第34-35页 |
| 6 中医药对缺血性脑卒中后NSCs niche的影响 | 第35-36页 |
| 7 问题及展望 | 第36页 |
| 参考文献 | 第36-46页 |
| 综述二 HIF-1α对神经干细胞增殖、分化的调控及中医药的作用 | 第46-58页 |
| 1 低氧对NSCs增殖、分化的影响 | 第46页 |
| 2 低氧对NSCs niche微环境的影响 | 第46-47页 |
| 3 HIF-Iα对NSCs增殖、分化的调控 | 第47-48页 |
| 3.1 对生理状态下NSCs的调节 | 第47页 |
| 3.2 对脑缺血缺氧损伤状态下NSCs的调节 | 第47-48页 |
| 4 HIF-1α信号通路对NSCs增殖、分化的调控 | 第48-49页 |
| 5 HIF-1α的靶基因对NSCs增殖、分化的调控 | 第49-52页 |
| 5.1 VEGF | 第49-50页 |
| 5.2 EPO | 第50页 |
| 5.3 MicroRNA | 第50-52页 |
| 6 中医药调控HIF-1α对NSCs的影响 | 第52页 |
| 7 问题及展望 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 第二部分 实验研究 | 第58-236页 |
| 前言 | 第58-61页 |
| 第一章 NSCs、星形胶质细胞、脑微血管内皮细胞分离培养的相关实验 | 第61-97页 |
| 第一节 胎鼠海马NSCs分离培养及鉴定 | 第61-71页 |
| 1 材料 | 第61-62页 |
| 2 实验方法 | 第62-64页 |
| 3 实验结果 | 第64-65页 |
| 4 讨论 | 第65页 |
| 5 结论 | 第65-67页 |
| 附图1 胎鼠海马NSCs分离培养及鉴定图片 | 第67-71页 |
| 第二节 新生大鼠脑星形胶质细胞分离培养及鉴定 | 第71-77页 |
| 1 材料 | 第71页 |
| 2 实验方法 | 第71-73页 |
| 3 实验结果 | 第73-74页 |
| 4 讨论 | 第74页 |
| 5 结论 | 第74-75页 |
| 附图2 星形胶质细胞分离培养及鉴定图片 | 第75-77页 |
| 第三节 新生大鼠脑微血管内皮细胞分离培养及鉴定 | 第77-83页 |
| 1 材料 | 第77页 |
| 2 实验方法 | 第77-79页 |
| 3 实验结果 | 第79页 |
| 4 讨论 | 第79-80页 |
| 5 结论 | 第80-81页 |
| 附图3 脑微血管内皮细胞分离培养与鉴定图片 | 第81-83页 |
| 第四节 人参皂苷促进NSCs增殖的最佳剂量及最佳给药时间点 | 第83-88页 |
| 1 材料 | 第83页 |
| 2 实验方法 | 第83-84页 |
| 3 实验结果 | 第84-86页 |
| 4 讨论 | 第86-87页 |
| 5 结论 | 第87-88页 |
| 第五节 人参皂苷促进星形胶质细胞增殖的最佳剂量及最佳给药时间点 | 第88-93页 |
| 1 材料 | 第88页 |
| 2 实验方法 | 第88-89页 |
| 3 实验结果 | 第89-91页 |
| 4 讨论 | 第91页 |
| 5 结论 | 第91-93页 |
| 第六节 人参皂苷促进脑微血管内皮细胞增殖的最佳剂量及最佳给药时间点 | 第93-97页 |
| 1 材料 | 第93页 |
| 2 实验方法 | 第93-94页 |
| 3 实验结果 | 第94-96页 |
| 4 讨论 | 第96页 |
| 5 结论 | 第96-97页 |
| 第二章 慢病毒转染NSCs对HIF-1α表达的沉默作用以及人参皂苷通过调控HIF-1α-VEGF信号通路对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响及机制 | 第97-152页 |
| 第一节 慢病毒转染NSCs对HIF-1α表达的沉默作用 | 第97-114页 |
| 1 材料 | 第97-98页 |
| 2 实验方法 | 第98-104页 |
| 3 实验结果 | 第104-109页 |
| 4 讨论 | 第109-110页 |
| 5 结论 | 第110-111页 |
| 附图4 慢病毒转染NSCs实验图片 | 第111-114页 |
| 第二节 人参皂苷对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响 | 第114-144页 |
| 1 材料 | 第114页 |
| 2 实验方法 | 第114-115页 |
| 3 实验结果 | 第115-131页 |
| 4 讨论 | 第131-132页 |
| 5 结论 | 第132-133页 |
| 附图5 NSCs、LV-NSCs复氧不同时间点各组细胞免疫荧光染色图片 | 第133-144页 |
| 第三节 人参皂苷对缺血/再灌注后NSCs HIF-1α-VEGF信号通路的作用 | 第144-152页 |
| 1 材料 | 第144页 |
| 2 实验方法 | 第144-145页 |
| 3 实验结果 | 第145-150页 |
| 4 讨论 | 第150-151页 |
| 5 结论 | 第151-152页 |
| 第三章 人参皂苷作用于星形胶质细胞通过调控HIF-1α-VEGF信号通路对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响及机制 | 第152-196页 |
| 第一节 人参皂苷作用于星形胶质细胞对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响 | 第152-186页 |
| 1 材料 | 第152-153页 |
| 2 实验方法 | 第153-154页 |
| 3 实验结果 | 第154-173页 |
| 4 讨论 | 第173-174页 |
| 5 结论 | 第174-175页 |
| 附图6 NSCs/AC、LV-NSCs /AC复氧不同时间点各组细胞免疫荧光染色图片 | 第175-186页 |
| 第二节 人参皂苷作用于星形胶质细胞对缺血/再灌注后NSCs HIF-1α-VEGF信号通路的作用 | 第186-196页 |
| 1 材料 | 第186页 |
| 2 实验方法 | 第186-189页 |
| 3 实验结果 | 第189-194页 |
| 4 讨论 | 第194页 |
| 5 结论 | 第194-196页 |
| 第四章 人参皂苷作用于脑微血管内皮细胞通过调控HIF-1α-VEGF信号通路对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响及机制 | 第196-236页 |
| 第一节 人参皂苷作用于脑微血管内皮细胞对缺血/再灌注后NSCs增殖、分化的影响 | 第196-228页 |
| 1 材料 | 第196-197页 |
| 2 实验方法 | 第197-198页 |
| 3 实验结果 | 第198-216页 |
| 4 讨论 | 第216页 |
| 5 结论 | 第216-217页 |
| 附图7 NSCs/EC、LV-NSCs/EC复氧不同时间点各组细胞免疫荧光染色图片 | 第217-228页 |
| 第二节 人参皂苷作用于脑微血管内皮细胞对缺血/再灌注后NSCs HIF-1α-VEGF信号通路的作用 | 第228-236页 |
| 1 材料 | 第228页 |
| 2 实验方法 | 第228-229页 |
| 3 实验结果 | 第229-234页 |
| 4 讨论 | 第234-235页 |
| 5 结论 | 第235-236页 |
| 参考文献 | 第236-242页 |
| 全文总结 | 第242-243页 |
| 全文创新点 | 第243-244页 |
| 致谢 | 第244-245页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第245-247页 |
| 个人简历 | 第247页 |
