| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 研究背景及意义 | 第15-24页 |
| 1.1 潜艇逃生过程对机体的影响 | 第16页 |
| 1.2 减压病的损伤机制 | 第16-19页 |
| 1.2.1 eNOS解偶联发生于减压病中可能性论证 | 第17-18页 |
| 1.2.2 血小板活化在减压病损伤中的作用机制 | 第18-19页 |
| 1.3 中药益肺活血颗粒 | 第19-21页 |
| 1.3.1 益肺活血颗粒组方 | 第19页 |
| 1.3.2 益肺活血颗粒主要作用及研究 | 第19-21页 |
| 1.4 立题意义 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-24页 |
| 第二章 实验技术路线 | 第24-38页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验技术路线 | 第24-27页 |
| 2.2.1 实验技术路线图 | 第24页 |
| 2.2.2 实验创新及突破点 | 第24-25页 |
| 2.2.3 eNOS解偶联检测指标选择 | 第25-26页 |
| 2.2.4 血小板活化检测指标选择 | 第26-27页 |
| 2.3 实验材料、溶液与设备 | 第27-28页 |
| 2.3.1 益肺活血复方浓缩的制取 | 第27-28页 |
| 2.4 实验动物及分组 | 第28页 |
| 2.5 实验方法 | 第28-37页 |
| 2.5.1 实验动物造模方法 | 第28-29页 |
| 2.5.2 实验动物药物灌服方式 | 第29页 |
| 2.5.3 实验动物样本采取 | 第29-30页 |
| 2.5.4 离体血管舒张力测定方法 | 第30页 |
| 2.5.5 肺动脉eNOS含量测定及其解偶联情况检测方法 | 第30-35页 |
| 2.5.6 肺动脉组织中蛋白硝基化检测方法 | 第35页 |
| 2.5.7 肺动脉组织中ROS水平检测方法 | 第35页 |
| 2.5.8 血小板活化率检测方法 | 第35-36页 |
| 2.5.9 肺组织中血小板聚集检测方法 | 第36页 |
| 2.5.10 血清中6-keto-PGF(1α)及TXB_2含量检测方法 | 第36页 |
| 2.5.11 肺动脉组织中vWF检测方法 | 第36-37页 |
| 2.6 数据统计学处理方法 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-38页 |
| 第三章 实验结果 | 第38-48页 |
| 3.1 模拟潜艇逃生大鼠eNOS解偶联情况 | 第38-40页 |
| 3.1.1 模拟潜艇逃生大鼠离体血管内皮依赖的血管舒张功能检测 | 第38-39页 |
| 3.1.2 3-硝基酪氨酸在肺动脉组织中的表达 | 第39页 |
| 3.1.3 eNOS表达及解离检测 | 第39-40页 |
| 3.1.4 肺动脉ROS检测结果 | 第40页 |
| 3.2 模拟潜艇逃生大鼠血小板活化及益肺活血颗粒对其干预 | 第40-48页 |
| 3.2.1 模拟潜艇逃生大鼠减压病的患病率、死亡率及益肺活血颗粒干预结果 | 第41-42页 |
| 3.2.2 模拟潜艇逃生大鼠气泡介导的血小板活化及益肺活血复方制剂干预结果 | 第42-43页 |
| 3.2.3 模拟潜艇逃生大鼠气泡引起血小板肺内聚集及益肺活血颗粒的抑制作用 | 第43-45页 |
| 3.2.4 模拟潜艇逃生大鼠肺动脉组织中vWF表达情况 | 第45-47页 |
| 3.2.5 模拟潜艇逃生大鼠血清中6-Keto-PGF1α-(PGI2的稳定代谢物)、TXB2(TXA2的稳定代谢物)及益肺活血颗粒的干预作用 | 第47-48页 |
| 第四章 结论与展望 | 第48-57页 |
| 4.1 主要结论及意义 | 第48-54页 |
| 4.1.1 模拟潜艇逃生大鼠eNOS解偶联与肺动脉内皮功能损伤 | 第48-50页 |
| 4.1.2 模拟潜艇逃生大鼠血小板活化情况 | 第50-51页 |
| 4.1.3 益肺活血颗粒对模拟潜艇逃生大鼠的干预作用 | 第51-53页 |
| 4.1.4 结论意义 | 第53-54页 |
| 4.2 展望 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 附件一：综述 | 第57-64页 |
| References | 第62-64页 |
| 附件二：中英文对照表 | 第64-65页 |
| 成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-69页 |
