| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩写符号说明 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 DPA的概述 | 第11-16页 |
| 1.2.1 DPA的存在、分子结构及代谢 | 第11-12页 |
| 1.2.2 DPA的功能 | 第12-14页 |
| 1.2.3 DPA对炎症的作用 | 第14-16页 |
| 1.3 PUFA的富集分离方法 | 第16-19页 |
| 1.3.1 尿素包合 | 第16-17页 |
| 1.3.2 低温结晶技术 | 第17-18页 |
| 1.3.3 色谱分离技术 | 第18页 |
| 1.3.4 酶法技术 | 第18页 |
| 1.3.5 分子蒸馏 | 第18-19页 |
| 1.4 立题依据与研究意义 | 第19页 |
| 1.5 课题研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 海生油脂脂肪酸组成及富含DPA原料油的筛选 | 第21-34页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-32页 |
| 2.3.1 六种海洋生物油中脂肪酸组成分析 | 第23-27页 |
| 2.3.2 六种原料油中脂肪酸sn-2，sn-1，3 位置分布 | 第27-31页 |
| 2.3.3 富含DPA原料油的筛选 | 第31-32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-34页 |
| 第三章 尿素包合-制备液相富集分离海豹油中的DPAn-3 | 第34-52页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 材料与方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第34页 |
| 3.2.2 方法 | 第34-35页 |
| 3.2.3 数据分析 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-51页 |
| 3.3.1 脂肪酸/尿素比对DPAn-3 富集效果的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.2 尿素包合温度对DPAn-3 富集效果的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.3 尿素包合时间对DPAn-3 富集效果的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.4 Box-Behnken响应面法确定尿素包合法富集DPAn-3 的最佳工艺条件 | 第40-48页 |
| 3.3.5 模型验证 | 第48页 |
| 3.3.6 制备液相分离纯化DPAn-3 | 第48-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 低温溶剂结晶-制备液相富集分离裂壶藻油中的DPAn-6 | 第52-69页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 材料与方法 | 第52-53页 |
| 4.2.1 材料与仪器 | 第52-53页 |
| 4.2.2 方法 | 第53页 |
| 4.2.3 制备液相纯化DPAn-6 | 第53页 |
| 4.2.4 数据分析 | 第53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-68页 |
| 4.3.1 低温溶剂结晶富集裂壶藻油FFA中的DPAn-6 和DHA | 第54-59页 |
| 4.3.2 低温溶剂结晶富集裂壶藻油中的DPAn-6 和DHA | 第59-66页 |
| 4.3.3 制备液相分离纯化DPAn-6 | 第66-68页 |
| 4.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 第五章 DPAn-3、DPAn-6 体外抗炎活性的研究 | 第69-85页 |
| 5.1 引言 | 第69页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第69-70页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第69-70页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第70页 |
| 5.3 RAW264.7 细胞的培养 | 第70-71页 |
| 5.3.1 细胞培养 | 第70页 |
| 5.3.2 RAW264.7 细胞的复苏 | 第70页 |
| 5.3.3 RAW 264.7 细胞的传代 | 第70-71页 |
| 5.3.4 RAW264.7 细胞的冻存 | 第71页 |
| 5.4 炎症的诱导 | 第71-74页 |
| 5.4.1 细胞活力的测定[57] | 第71页 |
| 5.4.2 Griess法测定NO含量 | 第71-72页 |
| 5.4.3 ELISA法检测PUFA对LPS诱导的RAW264.7 细胞因子的分泌量 | 第72页 |
| 5.4.4 RT-PCR测细胞因子基因表达量 | 第72-74页 |
| 5.4.5 各脂肪酸干预组细胞中脂肪酸组成分析 | 第74页 |
| 5.4.6 统计分析 | 第74页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第74-83页 |
| 5.5.1 DPAn-6、DPAn-3 与EPA、DHA对RAW264.7 细胞活力的影响 | 第74-75页 |
| 5.5.2 DPAn-6、DPAn-3 与EPA、DHA对RAW264.7 产NO的影响 | 第75-77页 |
| 5.5.3 DPAn-6、DPAn-3 与EPA、DHA对RAW264.7 细胞因子分泌的影响 | 第77-80页 |
| 5.5.4 不同浓度的PUFA对RAW264.7 细胞因子m RNA表达的影响 | 第80-82页 |
| 5.5.5 不同PUFA干预后RAW264.7 中FA组成 | 第82-83页 |
| 5.6 本章小结 | 第83-85页 |
| 主要结论和展望 | 第85-87页 |
| 主要结论 | 第85页 |
| 展望 | 第85-87页 |
| 论文创新点 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-97页 |
| 附图 六种海生油脂中脂肪酸组成的质谱图 | 第97-98页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第98页 |
