| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第7-11页 |
| 1. 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 植物的先天免疫系统 | 第11-14页 |
| 1.1.1 PTI | 第12-14页 |
| 1.1.2 ETI | 第14页 |
| 1.2 植物对病原微生物的防御反应 | 第14-16页 |
| 1.2.1 植物细胞壁 | 第15页 |
| 1.2.2 植物的防御反应 | 第15-16页 |
| 1.3 广谱抗性基因RPW8的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 稻瘟病的发病机制及其研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 我国稻瘟病的研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4.2 稻瘟病菌的侵染机制 | 第18-19页 |
| 1.4.3 水稻抗稻瘟病菌的研究进展 | 第19页 |
| 1.5 miRNA与植物的相互作用 | 第19-21页 |
| 1.5.1 miRNA的结构及其在植物中的功能研究 | 第19-20页 |
| 1.5.2 水稻中miRNA的功能研究及进展 | 第20-21页 |
| 1.6 本论文的选题依据与意义 | 第21-23页 |
| 2. 实验材料与方法 | 第23-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-29页 |
| 2.1.1 拟南芥材料及细菌病原菌 | 第23页 |
| 2.1.2 水稻材料及稻瘟病菌 | 第23-24页 |
| 2.1.3 水稻的遗传转化涉及的载体及菌株 | 第24页 |
| 2.1.4 实验涉及的酶,试剂及抗生素 | 第24页 |
| 2.1.5 实验涉及的培养基 | 第24-28页 |
| 2.1.6 实验涉及的实验仪器及耗材 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-43页 |
| 2.2.1 细菌生长实验 | 第29-30页 |
| 2.2.2 常用染色方法 | 第30-32页 |
| 2.2.3 活性氧迸发的检测 | 第32页 |
| 2.2.4 拟南芥和水稻DNA提取 | 第32-34页 |
| 2.2.5 Trizol法总提拟南芥及水稻RNA | 第34-37页 |
| 2.2.6 原生质体双荧光素酶报告系统 | 第37-40页 |
| 2.2.7 农杆菌介导的水稻的遗传转化 | 第40-41页 |
| 2.2.8 转基因水稻阳性鉴定 | 第41页 |
| 2.2.9 检测转基因水稻中miRNA的转录水平 | 第41-42页 |
| 2.2.10 转基因水稻对稻瘟病抗性的初步检测 | 第42-43页 |
| 3. 实验结果 | 第43-60页 |
| 3.1 RPW8.1通过增强PTI信号途径抵抗病原菌 | 第43-57页 |
| 3.1.1 RPW8.1表现出对细菌病原菌的抗性 | 第43-44页 |
| 3.1.2 RPW8.1增强了PAMPs激发的抗性反应 | 第44-47页 |
| 3.1.3 RPW8.1能够增强PAMPs分子诱发的类似ETI的抗性反应 | 第47-50页 |
| 3.1.4 RPW8.1削弱了毒性病原菌对PTI的抑制 | 第50-51页 |
| 3.1.5 RPW8.1可以部分抑制效应蛋白的分泌和毒性 | 第51-53页 |
| 3.1.6 RPW8.1增强植物抗性的过程需要PTI信号的参与 | 第53-57页 |
| 3.2 miR444b负调控水稻稻瘟病抗性 | 第57-60页 |
| 3.2.1 miR444b过表达载体的水稻遗传转化 | 第57页 |
| 3.2.2 miR444b负调控水稻稻瘟病抗性 | 第57-60页 |
| 4. 结果与讨论 | 第60-62页 |
| 4.1 RPW8.1通过增强PTI信号途径抵抗病原菌 | 第60-61页 |
| 4.2 miR444b可以负调控水稻对稻瘟病的抗性 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 附录 | 第71页 |
