| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 英文缩略表(Abbreviation) | 第11-13页 |
| 第一篇 文献综述 | 第13-35页 |
| 1. EHEC O157：H7的主要毒力因子 | 第13-17页 |
| ·紧密素 | 第13-14页 |
| ·志贺毒素 | 第14-16页 |
| ·溶血素和致病性质粒编码的其他毒力基因 | 第16页 |
| ·脂多糖（Lipopolysaccharide, LPS） | 第16-17页 |
| 2 O157：H7的流行病学 | 第17-19页 |
| ·流行病学特点 | 第17页 |
| ·流行情况 | 第17-19页 |
| 3 临床特征 | 第19页 |
| 4 致病机制 | 第19-22页 |
| ·A/E损伤 | 第19-21页 |
| ·产生志贺毒素和溶血素 | 第21页 |
| ·炎症 | 第21-22页 |
| 5 EHEC O157：H7检测方法 | 第22-27页 |
| ·常规性检测方法 | 第22-23页 |
| ·血清学检测方法 | 第23页 |
| ·免疫学检测 | 第23-25页 |
| ·分子生物学检测方法 | 第25-27页 |
| 6 防控策略 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-35页 |
| 第二篇 试验研究 | 第35-71页 |
| 第一章 EHEC O157：H7紧密素(intimin)单克隆抗体的制备与鉴定 | 第35-51页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| ·菌株 | 第36页 |
| ·试验动物及细胞 | 第36页 |
| ·试验主要试剂和仪器 | 第36-37页 |
| 2 方法 | 第37-42页 |
| ·抗原的制备 | 第37页 |
| ·免疫动物 | 第37-38页 |
| ·细胞融合 | 第38-39页 |
| ·间接ELISA最佳抗原包被浓度和血清稀释倍数的确定 | 第39-40页 |
| ·阳性杂交瘤细胞株的筛选 | 第40页 |
| ·阳性杂交瘤细胞的克隆化 | 第40页 |
| ·阳性杂交瘤细胞的冻存和复苏 | 第40-41页 |
| ·MAb腹水的制备 | 第41页 |
| ·间接ELISA方法检测单克隆抗体特异性及单抗对EHEC O157：H7的初步检测 | 第41页 |
| ·单克隆抗体活性鉴定 | 第41-42页 |
| ·杂交瘤细胞分泌抗体的稳定性鉴定 | 第42页 |
| ·腹水敏感性测定 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-47页 |
| ·Intimin重组蛋白的表达、纯化 | 第42-43页 |
| ·细胞融合率、阳性率与细胞克隆 | 第43页 |
| ·间接ELISA方法的建立 | 第43-44页 |
| ·间接ELISA方法检测单克隆抗体特异性及单抗对EHEC O157：H7的初步检测 | 第44-45页 |
| ·单抗对intimin最小检出限的初步测定 | 第45-46页 |
| ·Western-blot检测 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 第二章 EHEC O157双抗体夹心ELISA检测方法的建立 | 第51-71页 |
| 1 材料 | 第51-52页 |
| ·菌株与实验动物 | 第51-52页 |
| ·抗体 | 第52页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-56页 |
| ·兔抗EHEC O157：H7高免血清制备 | 第52-53页 |
| ·兔抗EHEC O157：H7高免血清的纯化 | 第53页 |
| ·提纯腹水、多抗效价和浓度测定 | 第53-54页 |
| ·双抗体夹心ELISA方法最适反应条件的确定 | 第54-55页 |
| ·特异性试验 | 第55-56页 |
| ·敏感性试验 | 第56页 |
| ·重复性试验 | 第56页 |
| ·阴阳临界值的确定 | 第56页 |
| 3 结果 | 第56-67页 |
| ·兔抗高免血清效价、纯度及浓度测定 | 第56-58页 |
| ·双夹心ELISA方法最适反应条件的确定 | 第58-65页 |
| ·特异性试验 | 第65页 |
| ·敏感性试验 | 第65-66页 |
| ·重复性试验 | 第66-67页 |
| ·阴阳临界值的确定 | 第67页 |
| 4 讨论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 全文总结 | 第71-73页 |
| 附录：常用试剂的配制 | 第73-75页 |
| 硕士期间发表文章 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
