| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-54页 |
| ·自组装概述 | 第14-37页 |
| ·自组装的起源及重要性 | 第14-15页 |
| ·自组装的相互作用力 | 第15-23页 |
| ·范德华力 | 第15-16页 |
| ·氢键作用 | 第16-17页 |
| ·疏水作用 | 第17-19页 |
| ·静电作用力 | 第19-20页 |
| ·空间和排空力 | 第20-23页 |
| ·自组装方法 | 第23-31页 |
| ·模板法自组装 | 第23页 |
| ·熵焓相互作用自组装 | 第23-25页 |
| ·场诱导自组装 | 第25-29页 |
| ·静电自组装 | 第29-30页 |
| ·氢键自组装 | 第30-31页 |
| ·自组装在生物医学中的应用 | 第31-37页 |
| ·生物传感器 | 第32-34页 |
| ·光热治疗 | 第34-35页 |
| ·组织再生与修复 | 第35-36页 |
| ·药物抗癌和治癌 | 第36-37页 |
| ·肾脏病及其治疗的概述 | 第37-50页 |
| ·肾的概述 | 第37-44页 |
| ·肾的结构与功能 | 第38-41页 |
| ·肾小球滤过膜的结构与功能 | 第41-44页 |
| ·肾病分类 | 第44-45页 |
| ·治疗方法 | 第45-50页 |
| ·抑制肾素-血管紧张素-醛固酮系统治疗 | 第46-47页 |
| ·他汀类治疗 | 第47-48页 |
| ·血压控制 | 第48页 |
| ·糖皮质激素 | 第48-49页 |
| ·酸碱治疗 | 第49-50页 |
| ·控制维生素 D 缺乏 | 第50页 |
| ·本论文的研究内容 | 第50-54页 |
| 第二章 多孔聚合物膜的程序可控自组装 | 第54-64页 |
| ·引言 | 第54-55页 |
| ·实验部分 | 第55-56页 |
| ·实验试剂 | 第55页 |
| ·实验仪器 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·自组装基元的制备 | 第55页 |
| ·多孔聚合物膜的可控自组装 | 第55-56页 |
| ·多孔聚合物膜及基元的结构和形貌的表征 | 第56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-63页 |
| ·多孔聚合物膜自组装基元的合成 | 第56-58页 |
| ·多孔聚合物膜(PPM)的程序可控自组装 | 第58-63页 |
| ·溶剂体积比对组装体孔膜形貌的影响 | 第59-60页 |
| ·组装基元的浓度对多孔膜组装形貌的影响 | 第60-61页 |
| ·搅拌速度对组装体多孔膜形貌的影响 | 第61-62页 |
| ·聚合物聚合度对组装体多孔膜形貌的影响 | 第62-63页 |
| ·多孔聚合物膜的 zeta 电荷 | 第63页 |
| ·本章小结 | 第63-64页 |
| 第三章 自组装膜的细胞毒性及肾靶向研究 | 第64-74页 |
| ·前言 | 第64页 |
| ·实验部分 | 第64-68页 |
| ·实验试剂 | 第64-65页 |
| ·实验仪器 | 第65-66页 |
| ·实验方法 | 第66-68页 |
| ·荧光素 FITC 的链接 | 第66页 |
| ·多孔薄膜修饰 anti-Nephrin | 第66页 |
| ·足细胞的复苏与传代 | 第66-67页 |
| ·肾小管上皮细胞的复苏与传代 | 第67页 |
| ·CCK-8 法测定足细胞活力值 | 第67页 |
| ·CCK-8 法测定肾小管上皮细胞活力值 | 第67-68页 |
| ·足细胞免疫荧光(immunofluorescent staining, IF)成像 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-73页 |
| ·荧光素 FITC-PPM 的表征 | 第68-69页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 靶向性研究 | 第69-70页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 体外细胞毒性性研究 | 第70-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 第四章 PPM-anti-Nephrin 对白蛋白肾病大鼠的影响研究 | 第74-93页 |
| ·引言 | 第74-75页 |
| ·实验部分 | 第75-83页 |
| ·实验动物 | 第75页 |
| ·实验试剂与配制 | 第75-77页 |
| ·实验仪器 | 第77页 |
| ·实验方法 | 第77-83页 |
| ·白蛋白负荷肾病模型制备 | 第77-78页 |
| ·血尿标本采集 | 第78页 |
| ·组织采集 | 第78-80页 |
| ·24 h 尿蛋白定量 | 第80页 |
| ·心脏、肝、肺、肾组织的病理评估 | 第80-81页 |
| ·免疫荧光染色检测肾小球 Podocin 的蛋白水平表达 | 第81-82页 |
| ·肾组织透射电镜(TEM)染色 | 第82页 |
| ·统计分析 | 第82-83页 |
| ·结果与讨论 | 第83-91页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白模型大鼠 24 h 尿蛋白影响的研究 | 第83-84页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白模型大鼠肾功能指标影响的研究 | 第84-85页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白模型大鼠重要器官组织影响的研究 | 第85-86页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白肾病大鼠肾组织病理影响的研究 | 第86-89页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白肾病大鼠肾小球足细胞病理的影响的研究 | 第89-90页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对白蛋白大鼠肾小球 Podocin 的蛋白表达影响的研究 | 第90-91页 |
| ·本章小结 | 第91-93页 |
| 第五章 非靶向性 PPM 对白蛋白肾病大鼠的影响研究 | 第93-106页 |
| ·引言 | 第93页 |
| ·实验部分 | 第93-101页 |
| ·实验动物 | 第93页 |
| ·实验试剂与配制 | 第93-95页 |
| ·实验仪器 | 第95页 |
| ·实验方法 | 第95-101页 |
| ·白蛋白负荷肾病模型制备 | 第95-96页 |
| ·血尿标本采集 | 第96页 |
| ·组织采集 | 第96-98页 |
| ·24 h 尿蛋白定量 | 第98-99页 |
| ·心脏、肝、肺、肾组织的病理评估 | 第99页 |
| ·免疫荧光染色检测肾小球 Podocin 的蛋白水平表达 | 第99-100页 |
| ·肾组织透射电镜(TEM)染色 | 第100-101页 |
| ·统计分析 | 第101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-105页 |
| ·PPM 对白蛋白肾病大鼠 24 h 尿蛋白影响的研究 | 第101-103页 |
| ·PPM 对白蛋白肾病大鼠重要器官组织病理影响的研究 | 第103页 |
| ·PPM 对白蛋白肾病大鼠肾组织病理影响的研究 | 第103-104页 |
| ·PPM 对白蛋白肾病大鼠肾小球足细胞病理影响影响的研究 | 第104-105页 |
| ·本章小结 | 第105-106页 |
| 第六章 PPM-anti-Nephrin 对 PAN 肾病大鼠的影响研究 | 第106-118页 |
| ·前言 | 第106页 |
| ·实验部分 | 第106-113页 |
| ·实验动物 | 第106-107页 |
| ·实验试剂与配制 | 第107-108页 |
| ·实验仪器 | 第108-109页 |
| ·实验方法 | 第109-113页 |
| ·PAN 肾病模型制备 | 第109页 |
| ·尿标本采集 | 第109页 |
| ·肾组织采集 | 第109页 |
| ·24 h 尿蛋白定量 | 第109-110页 |
| ·心脏、肝、肺、肾组织的病理评估 | 第110页 |
| ·免疫荧光染色检测肾小球 Podocin 的蛋白水平表达 | 第110-111页 |
| ·肾组织透射电镜(TEM)染色 | 第111-112页 |
| ·统计分析 | 第112-113页 |
| ·结果与讨论 | 第113-116页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 PAN 肾病大鼠 24 h 尿蛋白影响的研究 | 第113-114页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 PAN 肾病大鼠肾组织病理影响的研究 | 第114页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 PAN 肾病大鼠肾小球足细胞病理的影响的研究 | 第114-115页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 PAN 肾病大鼠肾小球 Podocin 的蛋白表达影响的研究 | 第115-116页 |
| ·本章小结 | 第116-118页 |
| 第七章 PPM-anti-Nephrin 对阿霉素肾病小鼠的影响研究 | 第118-135页 |
| ·引言 | 第118页 |
| ·实验部分 | 第118-126页 |
| ·实验动物 | 第118页 |
| ·实验仪器 | 第118-119页 |
| ·实验试剂与配制 | 第119-120页 |
| ·实验方法 | 第120-126页 |
| ·ADR 肾病模型制备 | 第120-121页 |
| ·血、尿标本采集 | 第121页 |
| ·肾组织采集 | 第121页 |
| ·24 h 尿蛋白定量 | 第121页 |
| ·心脏、肝、肺、肾组织的病理评估 | 第121-122页 |
| ·免疫荧光染色检测肾小球 Podocin 的蛋白水平表达 | 第122-123页 |
| ·肾组织透射电镜染色(TEM) | 第123页 |
| ·Real-time PCR 检测肾组织 Podocin mRNA 水平的表达 | 第123-126页 |
| ·统计分析 | 第126页 |
| ·结果与讨论 | 第126-133页 |
| ·造模第 3 周时 ADR 肾病小鼠生物学表征 | 第126-128页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 ADR 肾病小鼠尿蛋白影响的研究 | 第128-129页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 ADR 肾病小鼠血肌酐及肾小球滤过率影响的研究 | 第129页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 ADR 肾病小鼠肾组织病理影响的研究 | 第129-131页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 ADR 肾病小鼠肾小球足细胞病理影响的研究 | 第131-132页 |
| ·PPM-anti-Nephrin 对 ADR 肾病小鼠肾小球 Podocin 蛋白表达影响的研究 | 第132-133页 |
| ·本章小结 | 第133-135页 |
| 结论 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-159页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第159-161页 |
| 致谢 | 第161-162页 |
| 附件 | 第162页 |
