| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 中英文对照与缩略词一览表 | 第11-12页 |
| 第一部分 Nrf2-ARE 信号通路对脑出血灶周神经保护作用的机制研究 | 第12-40页 |
| 1 前言 | 第12-15页 |
| ·脑出血后灶周损伤的关键机制 | 第12页 |
| ·NF-κB 活化和小胶质细胞的激活与脑出血灶周损伤的关系 | 第12-13页 |
| ·Nrf2-ARE 通路调节内源性抗氧化和神经保护作用 | 第13页 |
| ·HO-1 介导神经保护 | 第13-14页 |
| ·目前待解决的问题及研究意义 | 第14-15页 |
| 2 材料与仪器 | 第15-17页 |
| ·材料 | 第15-16页 |
| ·仪器 | 第16-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-21页 |
| ·大鼠脑出血模型建立及 MRI 鉴定 | 第17-18页 |
| ·给药剂量及途径 | 第18页 |
| ·实验分组及取材 | 第18页 |
| ·神经功能评分 | 第18-20页 |
| ·免疫组织化学检查 Nrf2、HO-1、NF-κB 蛋白表达 | 第20页 |
| ·Western blot 分析 | 第20-21页 |
| ·免疫荧光检查步骤 | 第21页 |
| ·统计学处理 | 第21页 |
| 4 结果 | 第21-34页 |
| ·大鼠脑出血 MRI 扫描 | 第21-22页 |
| ·神经功能评分 | 第22-23页 |
| ·Nrf2、HO-1、NF-κB 在脑出血大鼠脑组织的表达变化 | 第23-28页 |
| ·免疫组化检测脑出血灶周 CD11b 阳性细胞表达 | 第28-29页 |
| ·免疫荧光双标检查 Nrf2 、HO-1 共表达 | 第29-31页 |
| ·Western blot 法显示 Nrf2 、HO-1 蛋白表达 | 第31-34页 |
| 5 讨论 | 第34-38页 |
| ·自体股动脉血建立大鼠尾状核脑出血模型 | 第34-35页 |
| ·Nrf2-ARE 通路调节内源性抗氧化和神经保护 | 第35-36页 |
| ·HO-1 在脑出血后具有神经保护作用 | 第36-37页 |
| ·HO-1 抑制 NF-κB 的作用 | 第37页 |
| ·脑出血后小胶质细胞的神经毒性和神经保护作用 | 第37-38页 |
| 6 结论与展望 | 第38-40页 |
| 第二部分 大鼠脑出血后内源性神经干细胞激活的机制研究 | 第40-52页 |
| 1 前言 | 第40-41页 |
| ·脑出血后内源性神经干细胞的激活、增殖 | 第40页 |
| ·脑出血后 ENSCs 迁移和分化 | 第40-41页 |
| ·ENSCs 的增殖、迁移和分化与 TGF-β信号通路的相关机制 | 第41页 |
| ·目前待解决的问题及研究意义 | 第41页 |
| 2 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 3 实验方法 | 第42-43页 |
| ·大鼠脑出血模型建立及 MRI 鉴定 | 第42页 |
| ·给药剂量及途径 | 第42页 |
| ·实验分组及取材 | 第42页 |
| ·神经功能评分 | 第42页 |
| ·免疫荧光检查 | 第42-43页 |
| ·免疫组织化学检测 TGF-β | 第43页 |
| ·统计学处理 | 第43页 |
| 4 结果 | 第43-49页 |
| ·大鼠脑出血 MRI 扫描 | 第43-44页 |
| ·神经功能评分 | 第44页 |
| ·Nestin 与 BrdU 免疫双标在脑出血大鼠脑组织的表达变化 | 第44-46页 |
| ·免疫组化检测胞浆 TGF-β表达差异 | 第46-49页 |
| 5 讨论 | 第49-50页 |
| ·脑出血与内源性神经干细胞 | 第49页 |
| ·内源性神经干细胞与 TGF-β的关系 | 第49-50页 |
| 6 结论及展望 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第58-59页 |
| 综述 | 第59-67页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
