| 前言 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-16页 |
| 第1章 综述 | 第16-25页 |
| ·组织型转谷氨酰胺酶（tTG）与糖尿病肾病 | 第17-19页 |
| ·组织型转谷氨酰胺酶（tTG）的结构与分布 | 第17页 |
| ·tTG的生物学性质 | 第17-18页 |
| ·tTG与纤维化疾病 | 第18页 |
| ·组织型转谷氨酰胺酶（tTG）与糖尿病肾病 | 第18-19页 |
| ·银杏叶提取物与糖尿病肾病 | 第19-25页 |
| ·银杏叶提取物的主要活性成分 | 第19-20页 |
| ·银杏黄酮的药理作用 | 第20-21页 |
| ·银杏内酯的药理作用 | 第21-22页 |
| ·银杏叶提取物的药理作用及临床应用 | 第22-25页 |
| 第2章 实验一：银杏叶提取物对糖尿病大鼠肾脏tTG 表达的影响 | 第25-30页 |
| ·材料与方法 | 第26-27页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第26页 |
| ·糖尿病(DM)模型的制备及分组处理 | 第26页 |
| ·PAS 染色评估肾脏 ECM 含量 | 第26页 |
| ·免疫组化检测 tTG 在大鼠肾组织中的表达 | 第26页 |
| ·Western Blot 检测各组大鼠肾脏 tTG 蛋白表达 | 第26-27页 |
| ·统计学处理 | 第27页 |
| ·实验结果 | 第27-29页 |
| ·血清、尿生化指标测定 | 第27-28页 |
| ·PAS 染色光镜观察 | 第28页 |
| ·免疫组化检测各组大鼠肾脏 tTG 表达 | 第28页 |
| ·Western Blot 检测各组大鼠肾脏 tTG 蛋白表达水平 | 第28-29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| 第3章 实验二：银杏叶提取物对高糖诱导的大鼠系膜细胞tTG 过表达的影响及 TGF- β、 CTGF 在其中的作用机制 | 第30-39页 |
| ·材料与方法 | 第31-34页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第31页 |
| ·肾小球系膜细胞的培养与传代 | 第31页 |
| ·ELISA检测银杏叶提取物对高糖作用下的HBZY-1大鼠肾小球系膜细胞tTG、TGF-β、CTGF、FN、Col Ⅳ含量的影响 | 第31-32页 |
| ·Western Blot 检测银杏叶提取物各组份对高糖诱导的肾小球系膜细胞tTG蛋白表达水平 | 第32页 |
| ·TGF-β、CTGF siRNA 转染 | 第32-34页 |
| ·western blot 检测 TGF-β、CTGF 干扰后tTG的含量 | 第34页 |
| ·结果 | 第34-37页 |
| ·银杏叶提取物对高糖作用下的 HBZY-1 大鼠肾小球系膜细胞tTG 、 TGF- β、 CTGF 、 FN 、 Col Ⅳ含量的影响 | 第34-36页 |
| ·Western Blot 检测银杏叶提取物各组份对高糖诱导的肾小球系膜细胞tTG蛋白表达水平 | 第36页 |
| ·Western Blot 检测TGF-β、CTGF siRNA 转染后tTG表达 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第4章 实验三：银杏叶提取物有效成分的体外筛选 | 第39-47页 |
| ·材料与方法 | 第39-41页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第39-40页 |
| ·银杏叶提取物成分分离制备 | 第40页 |
| ·肾小球系膜细胞的培养与传代 | 第40页 |
| ·MTT检测银杏叶提取物的各组分在不同浓度对细胞增殖的影响 | 第40-41页 |
| ·ELISA检测含量为9.5%含量为9.5%含量为9.5%银杏叶提取物各组分对HBZY-1大鼠肾小球系膜细胞FN、Col Ⅳ含量的影响 | 第41页 |
| ·结果 | 第41-45页 |
| ·银杏叶提取物各组分对HBZY-1大鼠肾小球系膜细胞形态的影响 | 第41-42页 |
| ·银杏叶提取物各组分对高糖作用下的大鼠肾小球系膜细胞增殖的影响 | 第42页 |
| ·银杏叶提取物各组分对 HBZY-1 大鼠肾小球系膜细胞 FN、Col Ⅳ含量的影响 | 第42-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 第5章 结论 | 第47-48页 |
| 创新点 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
