| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-32页 |
| ·DHA简介及其用途 | 第12-17页 |
| ·PUFAs的组成、结构及性质 | 第12-13页 |
| ·DHA的生理作用 | 第13-15页 |
| ·DHA的应用及需要注意的问题 | 第15-17页 |
| ·DHA的应用 | 第15-16页 |
| ·应注意的问题 | 第16-17页 |
| ·DHA的来源及生产现状 | 第17-22页 |
| ·DHA的一般来源 | 第17-18页 |
| ·可替代资源 | 第18-20页 |
| ·国内外微生物法生产DHA的研究概况 | 第20-22页 |
| ·藻类 | 第20页 |
| ·真菌类 | 第20-22页 |
| ·DHA产生菌的发酵条件优化的研究 | 第22-27页 |
| ·前体物质 | 第23页 |
| ·培养基中存在其他脂肪酸对DHA等合成的影响 | 第23页 |
| ·其他前体物质对DHA合成的影响 | 第23页 |
| ·培养基组份 | 第23-25页 |
| ·碳源 | 第23-24页 |
| ·氮源 | 第24-25页 |
| ·无机盐及微量元素 | 第25页 |
| ·培养条件 | 第25-27页 |
| ·盐度对菌体生长的影响 | 第25-26页 |
| ·温度 | 第26页 |
| ·通气与搅拌 | 第26页 |
| ·起始pH值 | 第26-27页 |
| ·光照 | 第27页 |
| ·培养时间 | 第27页 |
| ·DHA的氧化稳定性问题 | 第27-30页 |
| ·DHA的氧化问题 | 第27-28页 |
| ·引起DHA等多不饱和脂肪酸氧化的因素 | 第28-29页 |
| ·防止不饱和脂肪酸氧化的措施 | 第29-30页 |
| ·选题意义及研究内容 | 第30-32页 |
| ·选题意义 | 第30-31页 |
| ·研究内容 | 第31-32页 |
| ·Schizochyrium limacinum SR21脂质提取及检测方法的研究 | 第31页 |
| ·培养基组成以及环境条件对产DHA的影响 | 第31页 |
| ·DHA高产菌株的初步诱变选育 | 第31-32页 |
| 第二章 裂殖壶菌破胞和DHA甲酯化条件优化 | 第32-47页 |
| ·前言 | 第32-33页 |
| ·实验材料与设备 | 第33-34页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·菌种 | 第33页 |
| ·实验试剂 | 第33页 |
| ·培养基 | 第33页 |
| ·实验设备 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-39页 |
| ·菌种保藏 | 第34页 |
| ·种子液培养 | 第34页 |
| ·摇瓶发酵培养 | 第34-35页 |
| ·菌体破胞方法 | 第35页 |
| ·脂质提取方法 | 第35-36页 |
| ·DHA含量的分析 | 第36-39页 |
| ·DHA的甲酯化方法 | 第36-37页 |
| ·气相色谱分析DHA含量 | 第37-39页 |
| ·结果与讨论 | 第39-45页 |
| ·破胞方法的选择及优化 | 第39-41页 |
| ·破胞方法的选择 | 第39-40页 |
| ·高温干燥条件优化 | 第40-41页 |
| ·SR21脂质的提取方法 | 第41-42页 |
| ·脂质提取方法的比较 | 第41-42页 |
| ·酸性氯仿甲醇法 | 第42页 |
| ·DHA甲酯化方法的选择 | 第42-45页 |
| ·DHA甲酯化方法的选择 | 第42-44页 |
| ·三氟化硼乙醚催化法中KOH-MeOH量的确定 | 第44-45页 |
| ·确定的甲酯化方法 | 第45页 |
| ·本章小结 | 第45-47页 |
| 第三章 Schizochytrium limacinum SR21发酵制备DHA的条件优化 | 第47-70页 |
| ·前言 | 第47-48页 |
| ·实验材料与设备 | 第48-49页 |
| ·实验材料 | 第48-49页 |
| ·菌种 | 第48页 |
| ·实验试剂 | 第48页 |
| ·培养基 | 第48-49页 |
| ·实验设备 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49页 |
| ·菌种保藏 | 第49页 |
| ·种子液培养 | 第49页 |
| ·摇瓶培养 | 第49页 |
| ·分析方法 | 第49-52页 |
| ·pH值的测定 | 第49页 |
| ·菌体浓度的测定 | 第49-50页 |
| ·菌体浓度标准曲线 | 第49-50页 |
| ·发酵液中菌体浓度的测定 | 第50页 |
| ·葡萄糖浓度的测定-DNS法 | 第50-52页 |
| ·DNS法原理 | 第50页 |
| ·DNS试剂配制 | 第50-51页 |
| ·DNS法测定葡萄糖浓度标准曲线 | 第51页 |
| ·发酵液中葡萄糖浓度的测定 | 第51-52页 |
| ·细胞干重的测定 | 第52页 |
| ·脂质量的测定 | 第52页 |
| ·DHA含量的测定 | 第52页 |
| ·实验结果与讨论 | 第52-69页 |
| ·种龄和接种量的影响 | 第52-54页 |
| ·种子瓶生长曲线 | 第52-53页 |
| ·种龄和接种量对细胞干重的影响 | 第53-54页 |
| ·初始pH值的影响 | 第54-56页 |
| ·初始葡萄糖浓度的选择 | 第56-58页 |
| ·氮源考察 | 第58-59页 |
| ·装液量的影响 | 第59-61页 |
| ·金属离子的作用 | 第61-62页 |
| ·温度对SR21菌体生长以及脂质积累的影响 | 第62-67页 |
| ·SR21的最适培养温度 | 第63-64页 |
| ·变温培养对裂殖壶菌SR21产DHA的影响 | 第64-67页 |
| ·均匀设计寻优 | 第67-69页 |
| ·均匀实验设计 | 第67页 |
| ·均匀实验结果回归与分析 | 第67-68页 |
| ·验证实验 | 第68-69页 |
| ·本章小结 | 第69-70页 |
| 第四章 DHA高产菌株的初步诱变选育 | 第70-77页 |
| ·前言 | 第70-71页 |
| ·实验材料及设备 | 第71-72页 |
| ·出发菌株 | 第71页 |
| ·实验试剂 | 第71页 |
| ·培养基 | 第71页 |
| ·实验设备 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-74页 |
| ·菌种选育方法 | 第72-73页 |
| ·菌悬液制备 | 第72页 |
| ·紫外诱变 | 第72-73页 |
| ·高产菌株的筛选 | 第73页 |
| ·菌体浓度测定 | 第73页 |
| ·细胞干重的测定 | 第73-74页 |
| ·DHA的分析测定 | 第74页 |
| ·粗脂肪的提取测定 | 第74页 |
| ·DHA的甲酯化 | 第74页 |
| ·气相色谱分析 | 第74页 |
| ·紫外线照射剂量的确定 | 第74-75页 |
| ·紫外诱变结果分析 | 第75-76页 |
| ·本章小结 | 第76-77页 |
| 第五章 结论与展望 | 第77-81页 |
| ·结论 | 第77-78页 |
| ·本论文创新之处 | 第78-79页 |
| ·展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 致谢 | 第87页 |