| 中文摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 缩略词表 | 第17-19页 |
| 第1章 前言 | 第19-47页 |
| ·立题依据 | 第19-21页 |
| ·文献综述 | 第21-45页 |
| ·鸵鸟研究现状 | 第21-22页 |
| ·新城疫 | 第22-26页 |
| ·新城疫病毒(NDV)的病原特征 | 第22-23页 |
| ·新城疫在鸵鸟中的发生、流行及发病特点 | 第23-24页 |
| ·鸵鸟ND的临床症状和病理变化 | 第24页 |
| ·鸵鸟新城疫的常规检测 | 第24-25页 |
| ·NDV的RT-PCR技术检测 | 第25-26页 |
| ·免疫细胞在感染与免疫中的作用 | 第26-29页 |
| ·肥大细胞(MC) | 第27-28页 |
| ·浆细胞(PC) | 第28-29页 |
| ·神经内分泌免疫网络相关研究 | 第29-37页 |
| ·神经递质与神经内分泌免疫网络 | 第29-34页 |
| ·细胞因子与神经内分泌免疫网络 | 第34-37页 |
| ·病毒感染与细胞凋亡 | 第37-45页 |
| ·病毒感染诱导细胞凋亡 | 第38-41页 |
| ·病毒感染抑制细胞凋亡 | 第41-43页 |
| ·神经细胞凋亡 | 第43-45页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第45-47页 |
| 第2章 非洲雏鸵鸟免疫器官的形态学研究 | 第47-60页 |
| ·引言 | 第47页 |
| ·材料与方法 | 第47-51页 |
| ·试验材料 | 第47-50页 |
| ·试验动物 | 第47-48页 |
| ·主要药品及试剂 | 第48页 |
| ·主要仪器设备 | 第48页 |
| ·试剂配制 | 第48-49页 |
| ·染液的配制 | 第49-50页 |
| ·试验方法 | 第50-51页 |
| ·样品采集与处理 | 第50页 |
| ·样本制作 | 第50页 |
| ·浆细胞Feulgen-Methyleneblue(FMB)染色 | 第50页 |
| ·改良Weigert法染色 | 第50-51页 |
| ·结果 | 第51-53页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官解剖学特点 | 第51页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官显微结构特点 | 第51-52页 |
| ·胸腺 | 第51页 |
| ·腔上囊 | 第51-52页 |
| ·脾脏 | 第52页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官超微结构特点 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| ·雏鸵鸟胸腺的结构特点 | 第53-54页 |
| ·雏鸵鸟腔上囊的结构特点 | 第54页 |
| ·雏鸵鸟脾脏的组织结构特点 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-60页 |
| 第3章 鸡源NDV对雏鸵鸟免疫器官及中枢神经系统的病理组织学影响 | 第60-72页 |
| ·引言 | 第60页 |
| ·材料与方法 | 第60-63页 |
| ·试验材料 | 第60-61页 |
| ·病毒毒株 | 第60页 |
| ·试验动物 | 第60-61页 |
| ·主要试剂 | 第61页 |
| ·主要仪器设备 | 第61页 |
| ·试剂配制 | 第61页 |
| ·试验方法 | 第61-63页 |
| ·母源抗体检测 | 第61-62页 |
| ·病毒接种 | 第62页 |
| ·样本取材 | 第62页 |
| ·样本制作 | 第62页 |
| ·NDV检测 | 第62-63页 |
| ·引物设计 | 第63页 |
| ·结果 | 第63-65页 |
| ·RT-PCR法检测NDV | 第63-64页 |
| ·临床症状及剖检病变 | 第64页 |
| ·免疫器官的病理组织学变化 | 第64-65页 |
| ·中枢神经系统的病理组织学变化 | 第65页 |
| ·讨论 | 第65-66页 |
| ·小结 | 第66-72页 |
| 第4章 肥大细胞和浆细胞在鸡源NDV人工感染雏鸵鸟引起的免疫应答反应中的作用 | 第72-84页 |
| ·引言 | 第72-73页 |
| ·材料与方法 | 第73-74页 |
| ·试验材料 | 第73页 |
| ·试验动物 | 第73页 |
| ·主要药品及试剂 | 第73页 |
| ·主要仪器设备 | 第73页 |
| ·染液的配制 | 第73页 |
| ·试验方法 | 第73-74页 |
| ·样本采集与制作 | 第73-74页 |
| ·MC改良甲苯胺蓝法(Toluidine blue,TB)染色 | 第74页 |
| ·浆细胞Feulgen-Methylene blue(FMB)染色及结果判定 | 第74页 |
| ·数据统计 | 第74页 |
| ·结果 | 第74-78页 |
| ·免疫器官内MC的分布特点 | 第74-75页 |
| ·人工感染鸡源NDV雏鸵鸟免疫器官内MC的变化 | 第75页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官内PC的分布特点及感染鸡源NDV后雏鸵鸟免疫器官内PC的动态变化 | 第75-78页 |
| ·讨论 | 第78-80页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官内MC的分布特点 | 第78-79页 |
| ·人工感染鸡源NDV对雏鸵鸟免疫器官内MC的影响 | 第79-80页 |
| ·雏鸵鸟感染鸡源NDV免疫器官内PC数量的变化与体液免疫反应 | 第80页 |
| ·小结 | 第80-84页 |
| 第5章 鸡源NDV人工感染雏鸵鸟对神经免疫调控的影响 | 第84-97页 |
| ·引言 | 第84-85页 |
| ·材料与方法 | 第85-88页 |
| ·试验材料 | 第85-86页 |
| ·试验动物 | 第85页 |
| ·主要试剂 | 第85页 |
| ·主要仪器设备 | 第85页 |
| ·载玻片处理 | 第85页 |
| ·主要试剂配制 | 第85-86页 |
| ·试验方法 | 第86-88页 |
| ·样品采集与处理 | 第86页 |
| ·血清制备 | 第86-87页 |
| ·5-HT免疫组化SABC法染色 | 第87页 |
| ·IL-2放射免疫测定 | 第87-88页 |
| ·结果 | 第88-91页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官内5-HT免疫反应阳性细胞的分布 | 第88-89页 |
| ·雏鸵鸟免疫器官内5-HTir的动态变化 | 第89-90页 |
| ·免疫应答期间血清中IL-2水平的动态变化 | 第90-91页 |
| ·讨论 | 第91-93页 |
| ·5-HTir在雏鸵鸟免疫器官内的分布特点 | 第91-92页 |
| ·人工感染鸡源NDV对雏鸵鸟外周5-HT表达的影响 | 第92-93页 |
| ·鸡源NDV感染雏鸵鸟对血清中IL-2水平的影响 | 第93页 |
| ·小结 | 第93-97页 |
| 第6章 鸡源NDV人工感染雏鸵鸟对细胞凋亡的影响 | 第97-107页 |
| ·引言 | 第97页 |
| ·材料与方法 | 第97-99页 |
| ·材料 | 第97-98页 |
| ·试验动物 | 第97-98页 |
| ·主要试剂 | 第98页 |
| ·主要仪器设备 | 第98页 |
| ·主要试剂配制 | 第98页 |
| ·试验方法 | 第98-99页 |
| ·取材及光镜样本制作 | 第98页 |
| ·TUNEL法检测细胞凋亡 | 第98-99页 |
| ·凋亡指数和统计学分析 | 第99页 |
| ·结果 | 第99-102页 |
| ·免疫器官内淋巴细胞凋亡的动态分布 | 第99-101页 |
| ·中枢神经系统神经细胞凋亡的变化 | 第101-102页 |
| ·讨论 | 第102-103页 |
| ·鸡源NDV对雏鸵鸟免疫器官内细胞凋亡的影响 | 第102-103页 |
| ·鸡源NDV对雏鸵鸟中枢神经系统神经细胞凋亡的影响 | 第103页 |
| ·小结 | 第103-107页 |
| 结论 | 第107-108页 |
| 下一步研究计划 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-125页 |
| 致谢 | 第125-126页 |
| 附录1 个人简介 | 第126-127页 |
| 附录2 攻读博士学位期间以第一作者发表的论文 | 第127-128页 |
| 附录3 攻读博士学位期间参加的学术交流活动 | 第128页 |
