中国林蛙皮肤活性肽分离提取的研究
中文摘要 | 第1-3页 |
英文摘要 | 第3-4页 |
缩略语表 | 第4-8页 |
前言 | 第8-9页 |
1 生物活性肽概述 | 第9-25页 |
·生物活性肽的种类及其功能 | 第9-15页 |
·生理活性肽 | 第9-13页 |
·抗氧化肽 | 第13页 |
·调味肽 | 第13-15页 |
·两栖类皮肤活性肽与活性生物胺 | 第15-20页 |
·两栖类皮肤活性肽的组织学分布 | 第15页 |
·两栖类皮肤活性肽的特性 | 第15页 |
·两栖类皮肤活性肽的种类、功能及其哺乳类对应物 | 第15-18页 |
·两栖类皮肤活性生物胺 | 第18-19页 |
·两栖类皮肤甾类化合物 | 第19-20页 |
·皮肤活性肽的应用及前景 | 第20页 |
·两栖类皮肤活性肽的研究现状 | 第20-24页 |
·国外研究现状 | 第20-22页 |
·国内研究现状 | 第22-24页 |
·本研究预期目标 | 第24-25页 |
2 试验材料和试验方法 | 第25-38页 |
·试验试剂和仪器设备 | 第25-27页 |
·试剂 | 第25-26页 |
·仪器设备 | 第26-27页 |
·试验样本采集 | 第27页 |
·试验材料的制备 | 第27页 |
·中国林蛙鲜皮的制备 | 第27页 |
·中国林蛙干皮的制备 | 第27页 |
·中国林蛙皮肤活性肽的提取 | 第27-29页 |
·聚丙烯酰胺电泳图谱分析 | 第29-33页 |
·原理 | 第29-30页 |
·试验方法 | 第30-33页 |
·组装凝胶模具 | 第30页 |
·灌制分离胶 | 第30页 |
·灌制浓缩胶 | 第30-31页 |
·制备样品和上样 | 第31页 |
·电泳 | 第31页 |
·染色与脱色 | 第31-33页 |
·结果分析 | 第33页 |
·凝胶片干燥保存 | 第33页 |
·凝胶过滤层析分离活性肽 | 第33-35页 |
·凝胶过滤层析原理 | 第33页 |
·填料的选择 | 第33-34页 |
·层析柱尺寸的确定 | 第34页 |
·凝胶层析 | 第34-35页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳提纯活性肽 | 第35-36页 |
·试验方法 | 第35-36页 |
·SDS-PAGE电泳测定活性肽的分子量 | 第36-38页 |
·原理 | 第36页 |
·试验方法 | 第36-37页 |
·数据处理 | 第37-38页 |
3 活性检测 | 第38-40页 |
·试验器材和试剂 | 第38页 |
·试验器材 | 第38页 |
·试剂 | 第38页 |
·试验菌株 | 第38-39页 |
·试验方法 | 第39-40页 |
·菌株的培养 | 第39页 |
·抑菌试验 | 第39-40页 |
4 试验质量控制 | 第40-41页 |
5 结果 | 第41-53页 |
·林蛙皮肤粉碎方法的确定 | 第41页 |
·不同溶剂和浓度对林蛙皮肤蛋白多肽提取结果 | 第41-43页 |
·80%甲醇提取蛋白多肽获得率与提取时间的关系 | 第43页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳图谱分析结果 | 第43-45页 |
·不同浓度分离胶电泳分离结果 | 第43-45页 |
·林蛙鲜皮与干皮中蛋白多肽分布对比情况 | 第45页 |
·浓缩方法的选择 | 第45-47页 |
·考马斯亮兰R-250及G-250染色结果 | 第47-48页 |
·中国林蛙皮肤蛋白多肽分离纯化 | 第48-49页 |
·中国林蛙皮肤蛋白多肽经凝胶过滤分离纯化 | 第48-49页 |
·中国林蛙皮肤蛋白多肽PAGE电泳分离纯化 | 第49页 |
·SDS-PAGE 电泳分子量测定结果 | 第49-51页 |
·标准曲线的绘制 | 第49-50页 |
·测定结果 | 第50-51页 |
·中国林蛙皮肤蛋白多肽抑菌活性试验结果 | 第51-53页 |
6 讨论与分析 | 第53-58页 |
·中国林蛙皮肤蛋白多肽提取条件的选择 | 第53-54页 |
·浓缩条件的筛选 | 第54-55页 |
·浓缩方法的选择 | 第54页 |
·浓缩剂的选择 | 第54-55页 |
·中国林蛙皮肤活性肽分离纯化条件的选择 | 第55-56页 |
·电泳分离胶浓度对蛋白多肽分离效果的影响 | 第56-57页 |
·中国林蛙皮肤活性肽的活性分析 | 第57-58页 |
7 结论与建议 | 第58-61页 |
·结论 | 第58-59页 |
·中国两栖类资源合理开发利用的几点建议 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-68页 |
致谢 | 第68页 |