| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-30页 |
| ·微生物生态学概述 | 第14页 |
| ·微生物群落结构和多样性解析技术 | 第14-15页 |
| ·纯培养技术 | 第15-16页 |
| ·微生物分子生态学技术 | 第16-23页 |
| ·分子遗传指纹图谱 | 第17-19页 |
| ·克隆文库及序列分析 | 第19-20页 |
| ·454 测序技术 | 第20-21页 |
| ·分子杂交技术 | 第21-23页 |
| ·群落水平生理学指纹方法(CLPP) | 第23-26页 |
| ·Biolog 微平板 | 第24页 |
| ·荧光原位杂交与放射自显影的结合 | 第24-25页 |
| ·磷脂脂肪酸图谱分析（PLFA） | 第25-26页 |
| ·焦化废水中的芳香族化合物 | 第26页 |
| ·芳香族化合物的生物降解 | 第26-28页 |
| ·喹啉降解菌的研究 | 第28-30页 |
| 第二章 生物膜在不同培养条件下微生物群落结构与活性分析 | 第30-41页 |
| ·引言 | 第30-31页 |
| ·材料与方法 | 第31-34页 |
| ·材料来源 | 第31页 |
| ·培养基 | 第31页 |
| ·富集培养 | 第31-32页 |
| ·总DNA 的提取 | 第32页 |
| ·样品165 rRNA 基因V3 区PCR 扩增 | 第32页 |
| ·PCR 产物的DGGE 分析 | 第32页 |
| ·菌群活性的Biolog 微平板测定 | 第32-33页 |
| ·Biolog 微平板数据分析 | 第33页 |
| ·分光光度法测定苯酚降解情况 | 第33-34页 |
| ·结果和分析 | 第34-38页 |
| ·生物膜样品经不同条件培养后菌群结构的比较 | 第34-35页 |
| ·生物膜样品经不同条件培养后菌群活性的比较 | 第35-37页 |
| ·分离菌株苯酚降解情况分析 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-41页 |
| 第三章 喹啉反应器的微生物群落结构解析 | 第41-62页 |
| ·引言 | 第41-43页 |
| ·材料与方法 | 第43-50页 |
| ·反应装置及样品采集 | 第43-44页 |
| ·培养基 | 第44页 |
| ·菌株的分离筛选 | 第44-45页 |
| ·初步喹啉降解能力分析（分光光度法） | 第45页 |
| ·紫外可见光谱分析 | 第45页 |
| ·群落总基因组DNA 提取 | 第45-46页 |
| ·菌落杂交 | 第46-47页 |
| ·分离菌株16S rDNA 序列测定及分析 | 第47-48页 |
| ·16S rDNA 扩增和克隆文库构建 | 第48页 |
| ·克隆文库数据分析 | 第48页 |
| ·反应器克隆文库与分离菌株序列分析 | 第48-49页 |
| ·454 测序 | 第49页 |
| ·核酸序列登录号 | 第49-50页 |
| ·实验结果 | 第50-59页 |
| ·与喹啉降解有潜在关系的细菌富集分离 | 第50页 |
| ·通过菌落杂交筛选可能优势菌 | 第50-51页 |
| ·分离物喹啉代谢能力初步分析（UV-Vis） | 第51-53页 |
| ·分离物16S rRNA 基因序列分析结果 | 第53-55页 |
| ·反应器克隆文库分析结果 | 第55-57页 |
| ·序列分析结果 | 第57-59页 |
| ·讨论 | 第59-62页 |
| 第四章 喹啉反硝化反应器的微生物多样性和出水组成分析 | 第62-74页 |
| ·引言 | 第62-63页 |
| ·材料与方法 | 第63-66页 |
| ·反应装置及样品采集 | 第63-64页 |
| ·紫外吸收物质的测定 | 第64页 |
| ·样品预处理和DNA 提取 | 第64页 |
| ·454 测序 | 第64-65页 |
| ·核酸序列登录号（Accession number） | 第65页 |
| ·16S rRNA 基因 V3 区PCR 扩增及变性梯度凝胶电泳（DGGE）分析 | 第65-66页 |
| ·高效液相色谱(HPLC)分析条件 | 第66页 |
| ·实验结果 | 第66-72页 |
| ·反应器运行状况 | 第66-69页 |
| ·PCR-DGGE 指纹图谱分析 | 第69-70页 |
| ·454 测序结果 | 第70-71页 |
| ·Unifrac 主成分分析 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 研究生阶段发表的论文 | 第85页 |
