| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 符号说明 | 第11-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-52页 |
| ·引言 | 第16-19页 |
| ·磁性纳米粒子 | 第16-17页 |
| ·对生物相容性磁性纳米粒子的一般要求 | 第17-19页 |
| ·磁性纳米粒子的制备方法 | 第19-24页 |
| ·化学共沉法 | 第19-20页 |
| ·高温分解法 | 第20-21页 |
| ·微乳液法 | 第21-22页 |
| ·水热合成法 | 第22页 |
| ·溶胶-凝胶法 | 第22-23页 |
| ·其它方法 | 第23-24页 |
| ·超声化学 | 第24-27页 |
| ·超声化学原理 | 第24-25页 |
| ·超声波在聚合物合成方面的应用 | 第25-26页 |
| ·超声波在纳米材料合成及改性方面的应用 | 第26-27页 |
| ·磁性纳米粒子在生物学中的应用 | 第27-44页 |
| ·靶向药物 | 第28-30页 |
| ·磁热疗 | 第30-31页 |
| ·磁共振成像 | 第31-32页 |
| ·固定化 | 第32-34页 |
| ·分析检测 | 第34-36页 |
| ·分离纯化 | 第36-44页 |
| ·蛋白质及多肽分离纯化 | 第36-38页 |
| ·细胞分离 | 第38-41页 |
| ·核酸分离纯化 | 第41-44页 |
| ·质粒DNA提取技术研究现状 | 第44-48页 |
| ·菌体裂解 | 第44-46页 |
| ·质粒DNA纯化 | 第46-48页 |
| ·本研究的目的和内容 | 第48-52页 |
| ·研究目的意义 | 第48-50页 |
| ·研究内容 | 第50-52页 |
| 第二章 羧基功能化磁性纳米粒子(CMNPs)的超声辅助合成研究 | 第52-66页 |
| ·引言 | 第52-53页 |
| ·材料与方法 | 第53-56页 |
| ·实验材料及仪器设备 | 第53-54页 |
| ·铁氧体磁性纳米粒子的制备 | 第54页 |
| ·CMNPs的超声辅助合成 | 第54-55页 |
| ·表征方法 | 第55-56页 |
| ·结果与分析 | 第56-64页 |
| ·CMNPs的表观鉴定 | 第56-57页 |
| ·透射电镜分析 | 第57-58页 |
| ·磁·性能分析 | 第58-59页 |
| ·红外光谱分析 | 第59-61页 |
| ·热重-微分热重分析 | 第61-62页 |
| ·X射线衍射分析 | 第62-63页 |
| ·动态光散射分析 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-66页 |
| 第三章 羧基磁性纳米粒子富集大肠杆菌研究 | 第66-90页 |
| ·引言 | 第66-67页 |
| ·材料与方法 | 第67-72页 |
| ·试剂与仪器 | 第67-69页 |
| ·重要试剂配置方法 | 第69页 |
| ·菌种活化 | 第69页 |
| ·细菌增殖 | 第69页 |
| ·辅助CMNPs捕获大肠杆菌的试剂筛选 | 第69-70页 |
| ·酸辅助CMNPs捕获菌体条件优化 | 第70-71页 |
| ·菌体浓度及pH影响 | 第70页 |
| ·CMNPs用量及pH影响 | 第70页 |
| ·捕获时间及pH影响 | 第70页 |
| ·孵育时间的影响 | 第70-71页 |
| ·培养基的影响 | 第71页 |
| ·菌体浓度及pH对未包覆铁氧体捕获菌体的影响 | 第71页 |
| ·粒子用量及pH对未包覆铁氧体捕获菌体的影响 | 第71页 |
| ·钙盐辅助CMNPs捕获菌体条件优化 | 第71-72页 |
| ·菌体和钙离子浓度对捕获的影响 | 第71页 |
| ·CMNPs用量及钙离子浓度影响 | 第71-72页 |
| ·金属盐辅助CMNPs捕获菌体提取质粒DNA的可行性分析 | 第72页 |
| ·结果与讨论 | 第72-88页 |
| ·大肠杆菌捕获试剂筛选 | 第72-74页 |
| ·pH对CMNPs捕获大肠杆菌的影响 | 第74-81页 |
| ·菌体浓度及pH影响 | 第74-76页 |
| ·CMNPs用量及pH影响 | 第76-77页 |
| ·捕获时间及pH影响 | 第77-78页 |
| ·孵育时间的影响 | 第78页 |
| ·透射电镜鉴定 | 第78-79页 |
| ·培养基的影响 | 第79-81页 |
| ·pH对未包覆磁性纳米粒子捕获菌体的影响 | 第81-84页 |
| ·菌体浓度及pH影响 | 第81-82页 |
| ·粒子用量及pH影响 | 第82-83页 |
| ·透射电镜鉴定 | 第83-84页 |
| ·钙盐对CMNPs捕获菌体的影响 | 第84-87页 |
| ·菌体浓度及Ca~(2+)浓度影响 | 第84-86页 |
| ·CMNPs用量及Ca~(2+)浓度影响 | 第86-87页 |
| ·金属盐辅助CMNPs捕获菌体提取质粒DNA的可行性分析 | 第87-88页 |
| ·本章小结 | 第88-90页 |
| 第四章 羧基磁性纳米粒子在SPRI法纯化质粒DNA中的应用研究 | 第90-113页 |
| ·前言 | 第90-91页 |
| ·材料与方法 | 第91-96页 |
| ·试剂与仪器 | 第91-92页 |
| ·重要试剂配置方法 | 第92-93页 |
| ·细菌增殖 | 第93页 |
| ·菌体粗提液大量制备 | 第93-94页 |
| ·CMNPs辅助法小量制备菌体粗提液 | 第94页 |
| ·结合液(PEG8000/NaCl)浓度对质粒DNA纯化的影响 | 第94页 |
| ·CMNPs用量对质粒DNA纯化的影响 | 第94-95页 |
| ·质粒DNA吸附/解吸附动力学研究 | 第95页 |
| ·温度对质粒DNA吸附的影响 | 第95页 |
| ·温度对质粒DNA和RNA降解的影响 | 第95-96页 |
| ·SPRI法与其它提取法比较 | 第96页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第96页 |
| ·质粒DNA酶切鉴定 | 第96页 |
| ·电泳图谱的定量分析方法 | 第96页 |
| ·结果与讨论 | 第96-111页 |
| ·结合液浓度对质粒DNA纯化的影响 | 第96-101页 |
| ·CMNPs用量对质粒DNA纯化的影响 | 第101-102页 |
| ·吸附时间的影响 | 第102-103页 |
| ·解吸附时间影响 | 第103-104页 |
| ·温度对质粒DNA吸附的影响 | 第104-105页 |
| ·温度对DNA和RNA差示吸附的影响 | 第105-106页 |
| ·温度对DNA和RNA降解的影响 | 第106-108页 |
| ·SPRI法与其它提取法比较 | 第108-109页 |
| ·蛋白质含量检测 | 第109页 |
| ·质粒DNA酶切鉴定 | 第109-110页 |
| ·基于CMNPs快速小量质粒DNA提取 | 第110-111页 |
| ·本章小结 | 第111-113页 |
| 第五章 凝聚试剂介导的羧基磁性纳米粒子富集核酸研究 | 第113-141页 |
| ·引言 | 第113-115页 |
| ·材料与方法 | 第115-118页 |
| ·试剂与仪器 | 第115-116页 |
| ·重要试剂配置方法 | 第116页 |
| ·大肠杆菌增殖 | 第116页 |
| ·脱盐菌体粗提液大量制备 | 第116-117页 |
| ·凝聚试剂浓度对核酸沉淀的影响 | 第117页 |
| ·凝聚试剂对CMNPs吸附核酸的影响 | 第117-118页 |
| ·质粒DNA酶切鉴定 | 第118页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第118页 |
| ·电泳图谱的定量分析方法 | 第118页 |
| ·结果与讨论 | 第118-139页 |
| ·亚精胺对CMNPs富集核酸的影响 | 第118-130页 |
| ·亚精胺浓度对核酸沉淀的影响 | 第118-121页 |
| ·亚精胺浓度对CMNPs吸附核酸的影响 | 第121-123页 |
| ·吸附时间的影响 | 第123-124页 |
| ·CMNPs用量影响 | 第124-125页 |
| ·酸碱在亚精胺辅助CMNPs富集核酸中的作用 | 第125-128页 |
| ·酸碱在CMNPs富集核酸中的作用 | 第128-130页 |
| ·精胺对CMNPs富集核酸的影响 | 第130-138页 |
| ·精胺对核酸沉淀的影响 | 第130-132页 |
| ·精胺浓度对CMNPs吸附核酸的影响 | 第132-134页 |
| ·CMNPs用量的影响 | 第134-135页 |
| ·吸附时间的影响 | 第135-136页 |
| ·CMNPs对核酸的不可逆吸附鉴定 | 第136-138页 |
| ·蛋白质含量检测 | 第138页 |
| ·质粒DNA酶切鉴定 | 第138-139页 |
| ·本章小结 | 第139-141页 |
| 创新点 | 第141-142页 |
| 参考文献 | 第142-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第159-160页 |
