| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、MALAT1在不同状态牙龈组织中的表达 | 第18-25页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-23页 |
| 1.1.1 主要设备和仪器 | 第18-19页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第19页 |
| 1.1.4 研究对象和方法 | 第19-23页 |
| 1.2 结果 | 第23-24页 |
| 1.2.1 纳入健康及慢性牙周炎志愿者的一般情况分析 | 第23页 |
| 1.2.2 real time PCR检测MALAT1的表达水平 | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 二、体外细胞检测MALAT1的靶位点和结合方式 | 第25-42页 |
| 2.1 对象和方法 | 第25-34页 |
| 2.1.1 主要设备和仪器 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.1.4 研究对象和方法 | 第27-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-38页 |
| 2.2.1 HGFs的培养 | 第34-35页 |
| 2.2.2 RT-PCR检测MALAT1和miR-20a在细胞水平的表达 | 第35页 |
| 2.2.3 双荧光素报告基因实验检测MALAT1与miR-20a的结合 | 第35-36页 |
| 2.2.4 双荧光素报告基因实验检测miR-20a与TLR4的结合 | 第36-37页 |
| 2.2.5 MALAT1/mi R-20a/TLR4/Ago2 复合体的调控作用 | 第37-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-42页 |
| 三、P.g LPS或E.coli LPS刺激对人牙龈成纤维细胞中MALAT1、miR-20a、TLR4及炎性细胞因子表达的影响 | 第42-51页 |
| 3.1 对象和方法 | 第42-44页 |
| 3.1.1 主要设备和仪器 | 第42页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第43页 |
| 3.1.4 研究对象和方法 | 第43-44页 |
| 3.2 结果 | 第44-48页 |
| 3.2.1 LPS对HGFs中MALAT1、miR-20a和TLR4表达水平的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 LPS对HGFs中炎性细胞因子m RNA表达水平的影响 | 第45-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 四、HGFs中MALAT1对炎症细胞因子表达的调节作用 | 第51-71页 |
| 4.1 对象和方法 | 第51-59页 |
| 4.1.1 主要设备和仪器 | 第51页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.3 主要试剂的配制 | 第52-53页 |
| 4.1.4 研究对象和方法 | 第53-59页 |
| 4.2 结果 | 第59-68页 |
| 4.2.1 HGFs中转染试剂的转染效率 | 第59页 |
| 4.2.2 HGFs中si-MALAT1、miR-20a mimics及sno-MALAT1的效率 | 第59-62页 |
| 4.2.3 si-MALAT1对HGFs中miR-20a及炎性细胞因子表达水平的影响 | 第62-63页 |
| 4.2.4 sno-MALAT1对HGFs中miR-20a及炎性细胞因子表达水平的影响 | 第63-65页 |
| 4.2.5 miR-20a mimics对HGFs中MALAT1及炎性细胞因子表达水平的影响 | 第65-66页 |
| 4.2.6 LPS刺激下改变MALAT1或miR-20 水平对TLR4表达水平的影响 | 第66-68页 |
| 4.3 讨论 | 第68-70页 |
| 4.4 小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 长链非编码RNA MALAT1的研究进展 | 第78-87页 |
| 综述参考文献 | 第83-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88页 |
