| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 肿瘤免疫疗法 | 第10-13页 |
| 1.1.1 肿瘤疫苗 | 第11-12页 |
| 1.1.2 免疫检查点 | 第12页 |
| 1.1.3 细胞过继转输(ACT) | 第12-13页 |
| 1.2 肿瘤核酸疫苗 | 第13-14页 |
| 1.2.1 肿瘤疫苗发挥作用的机制 | 第13-14页 |
| 1.2.2 核酸疫苗的应用前景 | 第14页 |
| 1.3 mRNA肿瘤疫苗 | 第14-17页 |
| 1.3.1 mRNA体外转录技术的发展 | 第14-15页 |
| 1.3.2 核酸疫苗治疗肿瘤面临的障碍 | 第15-16页 |
| 1.3.3 mRNA肿瘤疫苗的应用现状与前景 | 第16-17页 |
| 1.4 核酸纳米递送系统 | 第17-19页 |
| 1.4.1 核酸纳米药物递送的优势 | 第17-18页 |
| 1.4.2 核酸纳米药物递送系统的分类 | 第18页 |
| 1.4.3 核酸纳米药物递送系统未来发展方向 | 第18-19页 |
| 1.5 选题依据以及主要研究内容 | 第19-22页 |
| 第2章 CLAN递送mRNA用于肿瘤疫苗的研究 | 第22-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要材料 | 第22页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第22页 |
| 2.1.3 实验小鼠 | 第22页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 mRNA的模板构建和体外转录 | 第23-25页 |
| 2.2.2 包载mRNA的CLAN的制备及其表征 | 第25-27页 |
| 2.2.3 检测细胞转染CLAN_(mRNA)后蛋白质的表达情况 | 第27-28页 |
| 2.2.4 体外诱导培养小鼠骨髓来源的树突状细胞(BMDCs) | 第28页 |
| 2.2.5 检测CLAN_(mRNA)诱导DCs的成熟和T细胞的增殖 | 第28页 |
| 2.2.6 检测CLAN包载的mEGFP在小鼠体内DCs中翻译成EGFP | 第28页 |
| 2.2.7 检测体内CLAN_(mRNA)诱导DCs的成熟和T细胞的增殖 | 第28-29页 |
| 2.2.8 检测体内CLAN_(mRNA)诱导功能性T细胞的增殖 | 第29页 |
| 2.2.9 CLAN_(mRNA)疫苗针对E.G7-OVA肿瘤小鼠模型的治疗 | 第29页 |
| 2.2.10 CLAN_(mRNA)疫苗接种后荷瘤小鼠免疫细胞亚群的变化 | 第29-30页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-39页 |
| 2.3.1 体外转录可翻译成肿瘤模式抗原的信使RNA | 第30-31页 |
| 2.3.2 包载mRNA的CLAN的制备和表征 | 第31-32页 |
| 2.3.3 CLAN_(mRNA)在细胞水平的转染与mRNA的翻译 | 第32-34页 |
| 2.3.4 细胞水平验证CLAN_(mOVA)诱导BMDC成熟和CD8~+T细胞增殖 | 第34-35页 |
| 2.3.5 CLAN_(mEGFP)在体内DCs中的蛋白表达 | 第35-36页 |
| 2.3.6 CLAN_(mOVA)刺激体内DCs成熟并诱导CD8~+T细胞增殖 | 第36-37页 |
| 2.3.7 CLAN_(mRNA)预防小鼠肿瘤生长情况 | 第37-38页 |
| 2.3.8 CLAN_(mRNA)治疗后荷瘤小鼠免疫细胞亚群及其细胞因子分泌 | 第38-39页 |
| 2.4 本章总结 | 第39-41页 |
| 附录A 主要仪器设备 | 第41-43页 |
| 附录B 常规试剂 | 第43-45页 |
| 附录C 常用试剂的准备 | 第45-47页 |
| 附录D 常规实验方法 | 第47-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第65页 |
