| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 蓝细菌概况 | 第10-12页 |
| 1.1.1 蓝细菌简介 | 第10-11页 |
| 1.1.2 鱼腥蓝细菌PCC 7120 | 第11-12页 |
| 1.2 RNase概况及其调控网络 | 第12-17页 |
| 1.2.1 RNase | 第12-14页 |
| 1.2.2 RNase E | 第14-15页 |
| 1.2.3 RNA降解复合体 | 第15-17页 |
| 1.2.4 RNase调控网络的多样性、复杂性 | 第17页 |
| 1.3 Anabaena PCC 7120中RNase研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-28页 |
| 2.1 菌株和质粒 | 第19页 |
| 2.2 菌株培养条件 | 第19-20页 |
| 2.3 实验所用主要分子生物学试剂 | 第20页 |
| 2.4 实验方法 | 第20-28页 |
| 2.4.1 Anabaena PCC7120基因组DNA的小量抽提 | 第20页 |
| 2.4.2 PCR | 第20页 |
| 2.4.3 大肠杆菌质粒DNA的抽提 | 第20-21页 |
| 2.4.4 质粒DNA的相关操作 | 第21页 |
| 2.4.5 大肠杆菌常规转化 | 第21页 |
| 2.4.6 His-tag标签蛋白的诱导表达与纯化 | 第21-23页 |
| 2.4.7 Brad Ford法测定蛋白浓度 | 第23-24页 |
| 2.4.8 多克隆抗体的制备及抗体效价检测 | 第24-26页 |
| 2.4.9 Anabaena PCC 7120的缺氮诱导 | 第26页 |
| 2.4.10 Anabaena PCC 7120总蛋白的抽提 | 第26页 |
| 2.4.11 蛋白质免疫印迹(Western Blotting) | 第26-28页 |
| 3 结果分析 | 第28-43页 |
| 3.1 Anabaena PCC 7120中RNase相关基因生物信息学分析 | 第28页 |
| 3.2 RNase E在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第28-37页 |
| 3.2.1 RNaseE在正常培养条件下的表达 | 第29页 |
| 3.2.2 RNaseE在缺乏氮源培养条件下的表达 | 第29-30页 |
| 3.2.3 RNase E剪切终产物的鉴定 | 第30-33页 |
| 3.2.4 剪切RNase E的蛋白酶的探索 | 第33-37页 |
| 3.3 PNPase在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第37-38页 |
| 3.4 其他RNase相关基因在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第38-43页 |
| 3.4.1 Enolase和RNA helicase在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第38-40页 |
| 3.4.2 内切核糖核酸酶(Endoribonucleases)在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第40-41页 |
| 3.4.3 外切核糖核酸酶(Exorbonucleases)在Anabaena PCC 7120中的表达 | 第41-43页 |
| 4 分析与讨论 | 第43-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 附录 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
